摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-7页 |
符号说明 | 第7-8页 |
目录 | 第8-11页 |
1 引言 | 第11-25页 |
·转化方法研究 | 第11-15页 |
·载体介导转化法 | 第11-13页 |
·DNA直接导入法 | 第13-14页 |
·种质转化法 | 第14-15页 |
·农杆菌介导转化法的研究进展和展望 | 第15-16页 |
·影响农杆菌介导玉米遗传转化率的因素 | 第16-21页 |
·农杆菌菌株对转化率的影响 | 第16-17页 |
·不同受体材料对转化率的影响 | 第17-18页 |
·受体基因型对转化率的影响 | 第18-19页 |
·农杆菌菌液浓度对转化率的影响 | 第19页 |
·农杆菌的侵染时间对转化率的影响 | 第19-20页 |
·侵染液PH值对转化率的影响 | 第20页 |
·培养基中其他添加物质对转化率的影响 | 第20-21页 |
·高赖氨酸蛋白基因的国内外研究进展 | 第21-23页 |
·高赖氨酸蛋白基因玉米的研究展望 | 第23-24页 |
·本研究的主要内容 | 第24-25页 |
2 材料与方法 | 第25-40页 |
·实验材料 | 第25页 |
·酶、引物和药品 | 第25页 |
·载体和菌株 | 第25-26页 |
·主要实验仪器 | 第26页 |
·主要试剂配置 | 第26-27页 |
·实验所用培养基配方 | 第27-29页 |
·培养液母液配置 | 第27-28页 |
·培养基配置 | 第28-29页 |
·植物表达载体的构建 | 第29-32页 |
·农杆菌感受态制备及转化方法 | 第32页 |
·玉米幼胚愈伤组织诱导体系的建立 | 第32-33页 |
·农杆菌介导玉米愈伤遗传转化体系的建立 | 第33-35页 |
·农杆菌菌液的制备 | 第33页 |
·侵染 | 第33-34页 |
·恢复培养 | 第34页 |
·筛选培养 | 第34页 |
·再生培养 | 第34-35页 |
·转基因植株的分子生物学检测 | 第35-40页 |
·T0代转基因植株的PCR检测 | 第35-36页 |
·T0代转基因植株的PCR-southern检测 | 第36-39页 |
·T0代转基因植株的快速蛋白试纸条检测 | 第39页 |
·T1代转基因植株的PPT涂抹鉴定 | 第39页 |
·T1代转基因植株的PCR检测 | 第39-40页 |
3 结果分析 | 第40-53页 |
·载体构建 | 第40-42页 |
·影响农杆菌介导的玉米愈伤组织遗传转化因素的研究 | 第42-44页 |
·农杆菌侵染浓度对玉米愈伤组织转化率的影响 | 第42-43页 |
·培养基中不同浓度的AS对玉米愈伤组织转化率的影响 | 第43页 |
·培养基中不同的筛选浓度对玉米抗性愈伤率的影响 | 第43-44页 |
·农杆菌侵染Hi ⅡA×B愈伤组织 | 第44-47页 |
·T0代植株的分子检测 | 第47-50页 |
·PCR检测 | 第47-48页 |
·PCR-Southern检测 | 第48-49页 |
·转基因植株的蛋白表达情况 | 第49-50页 |
·T1代转基因植株的分子鉴定 | 第50-53页 |
·PPT涂抹鉴定 | 第50-52页 |
·PCR鉴定 | 第52-53页 |
4 讨论 | 第53-56页 |
·关于外植体的选择 | 第53页 |
·影响农杆菌介导法转化效率的因素 | 第53-56页 |
·农杆菌的悬浮浓度 | 第53-54页 |
·AS浓度 | 第54页 |
·双丙胺磷临界浓度的确定 | 第54-55页 |
·其他培养条件 | 第55-56页 |
5 结论 | 第56-57页 |
参考文献 | 第57-63页 |
致谢 | 第63-64页 |
个人简历 | 第64页 |
在学期间发表的学术论文 | 第64页 |