摘要 | 第1-3页 |
Abstract | 第3-5页 |
中文文摘 | 第5-13页 |
第1章 绪论 | 第13-21页 |
·多糖的研究进展 | 第13-15页 |
·国外多糖的研究进展 | 第13-14页 |
·国内多糖的研究进展 | 第14-15页 |
·多糖的结构分析 | 第15-16页 |
·多糖的结构分类 | 第15页 |
·多糖结构测定方法 | 第15-16页 |
·化学方法 | 第15页 |
·物理方法 | 第15页 |
·生物学方法 | 第15-16页 |
·多糖的药理作用研究进展 | 第16-18页 |
·抗肿瘤活性 | 第16页 |
·增强免疫活性 | 第16-17页 |
·抗凝血活性 | 第17页 |
·抗疲劳活性 | 第17页 |
·抗菌活性 | 第17页 |
·抗病毒活性 | 第17-18页 |
·抗糖尿病活性 | 第18页 |
·降低血压、血脂活性 | 第18页 |
·本论文的研究背景及内容 | 第18-21页 |
·研究背景 | 第18-19页 |
·研究内容 | 第19-21页 |
第2章 多糖的提取工艺研究 | 第21-35页 |
·实验材料、仪器 | 第21页 |
·材料来源 | 第21页 |
·实验仪器 | 第21页 |
·试剂 | 第21页 |
·实验方法 | 第21-24页 |
·原料预处理 | 第21页 |
·红花桑寄生多糖的提取 | 第21-22页 |
·红花桑寄生多糖水提工艺研究 | 第22页 |
·单因素实验 | 第22页 |
·正交实验 | 第22页 |
·多糖得率计算 | 第22页 |
·红花桑寄生多糖醇沉工艺研究 | 第22-23页 |
·单因素实验 | 第22-23页 |
·正交实验 | 第23页 |
·木瓜蛋白酶法去蛋白工艺研究 | 第23-24页 |
·最佳酶用量的确定 | 第23页 |
·最佳酶解时间的确定 | 第23页 |
·考马斯亮蓝法测定蛋白含量 | 第23页 |
·蛋白质标准曲线的绘制 | 第23页 |
·未知蛋白质测定 | 第23-24页 |
·实验结果 | 第24-33页 |
·水提工艺的研究结果 | 第24-28页 |
·料液比对多糖得率的影响 | 第24页 |
·提取时间对多糖得率的影响 | 第24-25页 |
·提取温度对多糖得率的影响 | 第25页 |
·提取次数对多糖得率的影响 | 第25页 |
·水提正交实验结果 | 第25-28页 |
·醇沉工艺的研究结果 | 第28-31页 |
·乙醇浓度对醇沉效果的影响 | 第28页 |
·提取液的浓缩倍数对多糖得率的影响 | 第28-29页 |
·醇沉后静置时间对多糖得率的影响 | 第29页 |
·醇沉正交实验结果 | 第29-31页 |
·粗多糖水提醇沉工艺的总结 | 第31页 |
·去蛋白工艺的研究结果 | 第31-33页 |
·蛋白质含量的测定 | 第31-32页 |
·最佳酶用量的确定 | 第32页 |
·最佳酶解时间的确定 | 第32-33页 |
·去蛋白工艺总结 | 第33页 |
·小结与讨论 | 第33-35页 |
·讨论 | 第33-34页 |
·小结 | 第34-35页 |
第3章 红花桑寄生多糖分离纯化及理化性质鉴定 | 第35-47页 |
·实验试剂、仪器 | 第35页 |
·实验试剂 | 第35页 |
·实验仪器 | 第35页 |
·实验方法 | 第35-37页 |
·木瓜蛋白酶+Sevag法脱蛋白 | 第35页 |
·透析法去小分子杂质 | 第35-36页 |
·苯酚-硫酸法测多糖含量 | 第36页 |
·标准溶液的制备 | 第36页 |
·标准曲线的制备 | 第36页 |
·样品含量的测定 | 第36页 |
·红花桑寄生多糖的纯化 | 第36-37页 |
·DEAE-SephadexA-25离子交换柱和葡聚糖Sephadex G-100凝胶柱的预处理 | 第36页 |
·多糖纯化步骤 | 第36-37页 |
·多糖的纯度鉴定 | 第37页 |
·红花桑寄生多糖理化性质的测定 | 第37-38页 |
·多糖的鉴定 | 第37-38页 |
·多糖含量测定 | 第38页 |
·紫外光谱(UV)分析 | 第38页 |
·红外光谱(IR)分析 | 第38页 |
·实验结果 | 第38-45页 |
·葡萄糖标准曲线的绘制 | 第38-39页 |
·DEAE-SephadexA-25柱层析结果 | 第39页 |
·葡聚糖Sephadex G-100柱层析结果 | 第39-40页 |
·多糖纯度的鉴定 | 第40-41页 |
·多糖的鉴定 | 第41-42页 |
·多糖的含量 | 第42页 |
·紫外光谱(UV)分析 | 第42-43页 |
·红外光谱(IR)分析 | 第43-45页 |
·小结与讨论 | 第45-47页 |
·讨论 | 第45-46页 |
·小结 | 第46-47页 |
第4章 红花桑寄生多糖的体内抗肿瘤作用 | 第47-65页 |
·实验材料 | 第47页 |
·实验动物 | 第47页 |
·实验试剂 | 第47页 |
·实验仪器 | 第47页 |
·实验方法 | 第47-50页 |
·肿瘤动物模型的建立 | 第47页 |
·SP对S180荷瘤小鼠的抗肿瘤作用及对免疫器官的影响 | 第47-48页 |
·SP对CTX的增效减毒作用实验 | 第48页 |
·组织固定 | 第48页 |
·免疫组化法检测瘤组织Ki-67、Cyclin D1、Bax、Bcl-2蛋白的表达 | 第48-49页 |
·免疫组织化学结果判断 | 第49-50页 |
·统计学方法 | 第50页 |
·实验结果 | 第50-56页 |
·SP对S180荷瘤小鼠的抗肿瘤作用和对免疫器官的影响 | 第50-52页 |
·SP对CTX的增效减毒作用实验 | 第52-53页 |
·S180瘤组织中Ki-67蛋白的表达 | 第53-54页 |
·S180瘤组织中Cyclin D1蛋白的表达 | 第54页 |
·S180瘤组织中Bax蛋白的表达 | 第54-55页 |
·S180瘤组织中Bcl-2蛋白的表达 | 第55-56页 |
·讨论 | 第56-60页 |
·SP对S180荷瘤小鼠的抗肿瘤作用和对免疫器官的影响 | 第56-57页 |
·SP对CTX的增效减毒作用 | 第57-58页 |
·S180瘤组织中Ki-67蛋白的表达 | 第58页 |
·S180瘤组织中Cyclin D1蛋白的表达 | 第58-59页 |
·S180瘤组织中Bax、Bcl-2蛋白的表达 | 第59-60页 |
·小结 | 第60-65页 |
结论 | 第65-67页 |
附录 缩略词表 | 第67-69页 |
参考文献 | 第69-75页 |
攻读学位期间承担的科研任务与主要成果 | 第75-77页 |
致谢 | 第77-79页 |
个人简历 | 第79-81页 |