| 中文摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-10页 |
| 1 绪论 | 第10-20页 |
| ·小麦赤霉菌研究概述 | 第10-14页 |
| ·小麦赤霉菌的生物学特性 | 第10-11页 |
| ·小麦赤霉病概述 | 第11-13页 |
| ·小麦赤霉菌的次生代谢物---真菌毒素 | 第13-14页 |
| ·小麦赤霉菌FgAC1基因研究背景 | 第14-16页 |
| ·小麦赤霉菌的功能基因组学研究进展 | 第16-18页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第18-20页 |
| 2 FgAC1基因敲除盒的构建 | 第20-32页 |
| ·实验材料 | 第20-23页 |
| ·材料和试剂 | 第20页 |
| ·培养基和主要试剂配方 | 第20-23页 |
| ·仪器 | 第23页 |
| ·实验方法 | 第23-29页 |
| ·小麦赤霉菌PH-1菌株基因组DNA的提取——CTAB法 | 第23-24页 |
| ·质粒pCB1003的制备 | 第24-25页 |
| ·FgAC1基因敲除盒的构建—Split Marker法 | 第25-29页 |
| ·结果与分析 | 第29-31页 |
| ·PH-1菌株基因组DNA的获得 | 第29页 |
| ·质粒pCB1003的获得 | 第29-30页 |
| ·Split Marker法构建FgAC1基因敲除盒 | 第30-31页 |
| ·讨论 | 第31-32页 |
| 3 FgAC1基因敲除和转化子的鉴定 | 第32-42页 |
| ·实验材料 | 第32-34页 |
| ·材料和试剂 | 第32页 |
| ·培养基和主要试剂配方 | 第32-33页 |
| ·实验器材 | 第33-34页 |
| ·实验方法 | 第34-38页 |
| ·PH-1原生质体的制备与转化 | 第34-35页 |
| ·敲除突变体的筛选和鉴定 | 第35-38页 |
| ·结果与分析 | 第38-40页 |
| ·原生质体的转化 | 第38页 |
| ·筛选鉴定获得2个FgAC1缺失突变体 | 第38-40页 |
| ·讨论 | 第40-42页 |
| 4 FgAC1敲除突变体表型观察和致病力检测 | 第42-52页 |
| ·实验材料 | 第42页 |
| ·材料和试剂 | 第42页 |
| ·培养基和主要试剂配方 | 第42页 |
| ·实验器材 | 第42页 |
| ·实验方法 | 第42-44页 |
| ·菌落形态观察 | 第42页 |
| ·菌落生长速度测定 | 第42-43页 |
| ·分生孢子形态观察 | 第43页 |
| ·产孢量的测定 | 第43页 |
| ·菌株培养滤液颜色观察 | 第43页 |
| ·玉米丝侵染实验 | 第43-44页 |
| ·蕃茄果实侵染实验 | 第44页 |
| ·自交实验 | 第44页 |
| ·外源加入cAMP对菌落形态和生长的影响 | 第44页 |
| ·结果与分析 | 第44-50页 |
| ·菌落形态变化 | 第44-45页 |
| ·菌落生长速度测定 | 第45页 |
| ·分生孢子形态变化 | 第45-46页 |
| ·产孢量测定 | 第46-47页 |
| ·菌株培养滤液颜色变化 | 第47页 |
| ·FgAC1敲除突变体致病力检测 | 第47-49页 |
| 1. 玉米丝侵染实验. | 第48页 |
| 2. 蕃茄果实侵染实验 | 第48-49页 |
| ·自交实验 | 第49页 |
| ·外源加入cAMP对菌落形态和生长的影响 | 第49-50页 |
| ·讨论 | 第50-52页 |
| 5 全文结论 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
| 攻读硕士期间发表论文 | 第59-60页 |
| 附录 | 第60-64页 |
