中文摘要 | 第1-3页 |
ABSTRACT | 第3-8页 |
1 引言 | 第8-16页 |
·糖尿病视网膜病变研究进展 | 第9-11页 |
·祖国医学在糖尿病视网膜病变的研究进展 | 第11-14页 |
·本实验研究思路和研究目的 | 第14-16页 |
2 实验一 自发性糖尿病大鼠(GK大鼠)视网膜病变模型的评价 | 第16-32页 |
·材料与方法 | 第16-20页 |
·实验材料 | 第16-17页 |
·实验动物 | 第16页 |
·实验试剂与药品 | 第16页 |
·主要实验仪器 | 第16-17页 |
·实验方法 | 第17-20页 |
·实验安排 | 第17页 |
·测试指标与方法 | 第17-20页 |
·一般状态的观察 | 第17页 |
·体重 | 第17页 |
·血糖 | 第17页 |
·组织学处理 | 第17-18页 |
·视网膜毛细血管基底膜厚度(RCBM)的测定 | 第18页 |
·视网膜血管消化铺片 | 第18页 |
·载玻片的处理 | 第18页 |
·切片及铺片 | 第18页 |
·电镜标本制备 | 第18-19页 |
·裂隙灯检测 | 第19页 |
·眼底检测 | 第19页 |
·荧光素钠血管照影检测 | 第19-20页 |
·统计方法 | 第20页 |
·结果 | 第20-32页 |
·自发性糖尿病大鼠(GK大鼠)生存状态的观察 | 第20-21页 |
·一般状态的观察 | 第20页 |
·体重的变化 | 第20页 |
·血糖的变化 | 第20-21页 |
·自发性糖尿病大鼠(GK大鼠)视网膜形态学损害超微结构的观察 | 第21-30页 |
·视网膜组织切片 | 第22-24页 |
·视网膜消化铺片 | 第24-28页 |
·电镜标本观察 | 第28-30页 |
·自发性糖尿病大鼠(GK大鼠)眼部的观察 | 第30-32页 |
·裂隙灯检测 | 第30页 |
·眼底照相检测 | 第30页 |
·荧光素钠眼底血管照影检测 | 第30-32页 |
3 实验二 芪灯明目胶囊对6个月病程的自发性糖尿病大鼠视网膜蛋白激酶C及玻璃体血管内皮生长因子的影响 | 第32-42页 |
·材料与方法 | 第32-36页 |
·实验材料 | 第32-33页 |
·实验动物 | 第32页 |
·实验试剂与药品 | 第32页 |
·主要实验仪器 | 第32-33页 |
·实验方法 | 第33-36页 |
·分组方法 | 第33页 |
·给药方法 | 第33页 |
·测试指标与方法 | 第33-36页 |
·一般状态的观察 | 第33页 |
·体重 | 第33-34页 |
·血糖 | 第34页 |
·视网膜蛋白激酶C的检测 | 第34-35页 |
·玻璃体内中血管内皮生长因子(VEGF)的检测 | 第35-36页 |
·统计方法 | 第36页 |
·结果 | 第36-42页 |
·芪灯明目胶囊对DM大鼠生存状态的影响 | 第36-38页 |
·一般状态的观察 | 第36-37页 |
·芪灯明目胶囊对GK大鼠血糖的影响 | 第37-38页 |
·芪灯明目胶囊对GK大鼠视网膜蛋白激酶C(PKC)表达的影响 | 第38-41页 |
·芪灯明目胶囊对GK大鼠玻璃体血管内皮生长因子的影响 | 第41-42页 |
4 讨论 | 第42-52页 |
·自发性糖尿病大鼠动物模型的评价 | 第42-44页 |
·观察指标的选择 | 第44-48页 |
·视网膜蛋白激酶C(PKC) | 第44-47页 |
·PKC的种类和结构 | 第44-45页 |
·糖尿病状态下DAG介导的PKC活化 | 第45页 |
·高血糖状态下PKC激活的生化机制 | 第45-46页 |
·PKC活化所致的视网膜病理学改变 | 第46页 |
·PKC活化所致的血管通透性增加及新生血管形成 | 第46-47页 |
·玻璃体血管内皮生长因子(VEGF) | 第47-48页 |
·芪灯明目胶囊防治DR的机理探讨 | 第48-52页 |
·芪灯明目胶囊主药解析及其现代药理研究在DR中的应用机理 | 第48-49页 |
·芪灯明目胶囊具有抑制糖尿病大鼠视网膜组织PKC激活的作用$ | 第49-50页 |
·芪灯明目胶囊能降低糖尿病大鼠玻璃体VEGF含量$ | 第50-51页 |
·芪灯明目胶囊能改善自发性糖尿病大鼠生存状态 | 第51-52页 |
5 结论 | 第52-53页 |
致谢 | 第53-54页 |
参考文献 | 第54-61页 |
附件1 在校期间公开发表的学术论文 | 第61-62页 |