| 中文摘要 | 第1-17页 |
| 英文摘要 | 第17-19页 |
| 第一章 引言 | 第19-33页 |
| 1 有机污染物无害化处理技术及进展 | 第19-23页 |
| ·物理法 | 第19-20页 |
| ·吸附法 | 第19页 |
| ·膜分离技术 | 第19页 |
| ·超声波辐射技术 | 第19-20页 |
| ·化学法 | 第20-22页 |
| ·混凝法 | 第20页 |
| ·化学氧化法 | 第20-21页 |
| ·臭氧氧化法 | 第20页 |
| ·Fenton试剂氧化法 | 第20页 |
| ·高温深度氧化法 | 第20-21页 |
| ·光催化氧化 | 第21页 |
| ·电化学法 | 第21-22页 |
| ·生化法 | 第22页 |
| ·生物处理技术 | 第22-23页 |
| 2 金属卟啉以及氯化血红素研究进展 | 第23-26页 |
| ·金属卟啉类过氧化物模拟酶在光度分析中的应用 | 第23-24页 |
| ·金属卟啉类过氧化物模拟酶在荧光分析中的应用 | 第24页 |
| ·氯化血红素催化作用的研究进展 | 第24-26页 |
| 3 溴化乙锭处理方法 | 第26-27页 |
| ·物理方法 | 第26-27页 |
| ·化学中和的方法 | 第27页 |
| 4 论文设想 | 第27-28页 |
| 5 参考文献 | 第28-33页 |
| 第二章 Hemin-H_2O_2-EB 催化体系的研究与应用 | 第33-61页 |
| 1 均相 Hemin-H_2O_2体系催化 EB 的转化 | 第33-44页 |
| ·仪器与试剂 | 第33页 |
| ·溶液配制 | 第33-34页 |
| ·实验方法 | 第34-36页 |
| ·氯化血红素均相催化溴化乙锭的转化 | 第34页 |
| ·反应条件的优化 | 第34-36页 |
| ·反应过程的实时测定 | 第36页 |
| ·结果与分析 | 第36-44页 |
| ·荧光性质 | 第36-38页 |
| ·酸度的影响 | 第38-40页 |
| ·H_2O_2浓度的影响 | 第40-41页 |
| ·Hemin浓度的影响 | 第41-42页 |
| ·EB浓度的影响 | 第42-43页 |
| ·温度及反应时间的影响 | 第43页 |
| ·反应过程的实时测定 | 第43-44页 |
| 2 Hemin 的固定化及其催化性能的研究 | 第44-50页 |
| ·仪器与试剂 | 第45页 |
| ·实验方法 | 第45-47页 |
| ·氯化血红素标准曲线的绘制 | 第45页 |
| ·硅胶的活化 | 第45页 |
| ·硅胶与氯化血红素的偶联及催化活性的测定 | 第45-46页 |
| ·偶联率的测定 | 第46页 |
| ·固载型催化剂操作稳定性的考察 | 第46页 |
| ·固载型催化剂的酸碱稳定性 | 第46-47页 |
| ·固载型催化剂的热稳定性 | 第47页 |
| ·结果与讨论 | 第47-50页 |
| ·氯化血红素标准曲线 | 第47页 |
| ·偶联率的测定 | 第47-48页 |
| ·固载型催化剂稳定性的考察 | 第48页 |
| ·固载型催化剂酸碱性考察 | 第48-49页 |
| ·固载型催化剂热稳定性考察 | 第49-50页 |
| 3 Fenton( Fe~(2+)/ H_2O_2)反应对EB的转化作用研究 | 第50-55页 |
| ·仪器和试剂 | 第50-51页 |
| ·实验方法 | 第51-52页 |
| ·Fenton 反应 | 第51页 |
| ·Fenton 反应最佳条件优化 | 第51-52页 |
| ·结果与讨论 | 第52-55页 |
| ·Hemin 与FeSO_4催化产物的比较 | 第52页 |
| ·Hemin体系与 FeSO_4体系在pH上的比较 | 第52-53页 |
| ·Hemin 体系与 FeSO_4 体系在过氧化氢用量的比较 | 第53页 |
| ·Hemin 体系与 FeSO_4 体系在酶用量上的比较 | 第53-55页 |
| 4 溴化乙锭荧光法均相检测羟自由基 | 第55-57页 |
| ·仪器与试剂 | 第55页 |
| ·实验方法 | 第55-56页 |
| ·羟自由基的测定 | 第55页 |
| ·羟自由基清除率的测定 | 第55-56页 |
| ·结果与讨论 | 第56-57页 |
| ·羟自由基的测定 | 第56页 |
| ·羟自由基清除率的测定 | 第56-57页 |
| 5.结论 | 第57页 |
| 6 参考文献 | 第57-61页 |
| 第三章 Hemin-H_2O_2-EB体系反应产物的分离、纯化与鉴定 | 第61-80页 |
| 1 反应产物的薄层层析分析 | 第61-64页 |
| ·仪器和试剂 | 第61页 |
| ·试剂的配制 | 第61页 |
| ·实验方法 | 第61-62页 |
| ·结果与分析 | 第62-64页 |
| ·展开剂的选择 | 第62页 |
| ·展开结果的分析 | 第62-64页 |
| 2 反应产物的高效液相色谱分析 | 第64-71页 |
| ·仪器和试剂 | 第65页 |
| ·实验方法 | 第65-66页 |
| ·结果与讨论 | 第66-71页 |
| ·流动相及配比的选择 | 第66页 |
| ·流速的选择 | 第66-67页 |
| ·检测波长选择 | 第67页 |
| ·仪器精密度实验 | 第67页 |
| ·稳定性实验 | 第67-68页 |
| ·溴化乙锭及其降解产物HPLC 分离情况 | 第68-71页 |
| 3 反应产物的硅胶柱层析制备 | 第71-74页 |
| ·仪器和试剂 | 第71-72页 |
| ·实验方法 | 第72页 |
| ·结果与讨论 | 第72-74页 |
| ·洗脱液的选择 | 第72页 |
| ·薄层及荧光结果分析 | 第72-74页 |
| 4 反应产物的分子光谱分析 | 第74-77页 |
| ·仪器与试剂 | 第74页 |
| ·实验方法 | 第74页 |
| ·结果与讨论 | 第74-77页 |
| ·吸收光谱特性 | 第74-76页 |
| ·荧光光谱特性 | 第76-77页 |
| ·荧光特性 | 第77页 |
| 5 小结 | 第77页 |
| 6 参考文献 | 第77-80页 |
| 第四章 溴化乙锭反应产物的生物学研究 | 第80-97页 |
| 1 反应产物与DNA分子的相互作用研究 | 第80-86页 |
| ·仪器和试剂 | 第81页 |
| ·实验方法 | 第81-82页 |
| ·DNA浓度的选择 | 第81-82页 |
| ·荧光各向异性测定 | 第82页 |
| ·凝胶柱分离 | 第82页 |
| ·荧光检测 | 第82页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳检测 | 第82页 |
| ·结果与讨论 | 第82-86页 |
| ·DNA 浓度的选择 | 第82-83页 |
| ·DNA 对反应产物荧光强度的影响 | 第83-84页 |
| ·荧光各向异性分析 | 第84页 |
| ·荧光检测结果 | 第84-85页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳结果分析 | 第85-86页 |
| 2 细胞核染色 | 第86-88页 |
| ·仪器和试剂 | 第86-87页 |
| ·实验方法 | 第87页 |
| ·结果和讨论 | 第87-88页 |
| 3 Ames实验 | 第88-95页 |
| ·仪器和试剂 | 第88-90页 |
| ·培养基制备 | 第89页 |
| ·鉴定菌株基因型用试剂 | 第89-90页 |
| ·10%S9 混合液的配置 | 第90页 |
| ·菌株及增菌培养 | 第90-91页 |
| ·试验菌株 | 第90页 |
| ·增菌培养 | 第90-91页 |
| ·菌株鉴定和保存 | 第91-92页 |
| ·菌株基因型鉴定 | 第91-92页 |
| ·自发回变数测定 | 第92页 |
| ·菌株保存 | 第92页 |
| ·实验方法 | 第92页 |
| ·结果与讨论 | 第92-95页 |
| 4 小节 | 第95页 |
| 5 参考文献 | 第95-97页 |
| 致谢 | 第97页 |
