| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-12页 |
| 引言 | 第12-14页 |
| 1.文献综述 | 第14-36页 |
| ·氧化应激与神经退行性疾病 | 第14-19页 |
| ·活性氧的产生与清除 | 第15-16页 |
| ·活性氧的作用机制 | 第16-17页 |
| ·氧化应激与阿尔茨海默病(AD) | 第17-18页 |
| ·氧化应激与帕金森病(PD) | 第18-19页 |
| ·氧化应激与细胞凋亡 | 第19-28页 |
| ·细胞凋亡的一般概念 | 第19-20页 |
| ·细胞凋亡主要调控因子 | 第20-25页 |
| ·氧化应激与细胞凋亡 | 第25-28页 |
| ·天然抗氧化剂在神经退行性疾病中的研究及应用 | 第28-30页 |
| ·中药益智仁的研究概况 | 第30-34页 |
| ·益智仁的生物学特性 | 第30-31页 |
| ·益智仁化学成分的研究概况 | 第31-32页 |
| ·益智仁药理作用的研究概况 | 第32-34页 |
| ·小结 | 第34-36页 |
| 2.多巴胺能PC12细胞的氧化应激损伤模型的建立 | 第36-44页 |
| ·实验材料及设备 | 第37-38页 |
| ·细胞系 | 第37页 |
| ·试剂 | 第37页 |
| ·仪器 | 第37页 |
| ·溶液配制 | 第37-38页 |
| ·实验方法 | 第38-39页 |
| ·细胞培养 | 第38页 |
| ·细胞存活率的检测 | 第38-39页 |
| ·统计学处理 | 第39页 |
| ·实验结果 | 第39-41页 |
| ·H_2O_2对PC12细胞存活率的影响 | 第39-40页 |
| ·Glu对PC12细胞存活率的影响 | 第40页 |
| ·Mpp~+对PC12细胞存活率的影响 | 第40-41页 |
| ·讨论 | 第41-43页 |
| ·小结 | 第43-44页 |
| 3.神经活性成分PCA的分离及鉴定 | 第44-56页 |
| ·实验材料及设备 | 第44-46页 |
| ·药材 | 第44页 |
| ·试剂 | 第44-45页 |
| ·仪器 | 第45-46页 |
| ·实验方法 | 第46-47页 |
| ·细胞培养 | 第46页 |
| ·益智仁提取物制备 | 第46页 |
| ·细胞存活率的检测 | 第46页 |
| ·IC_(50)值的计算 | 第46页 |
| ·益智仁神经活性组分的提取分离路线 | 第46-47页 |
| ·统计学处理 | 第47页 |
| ·实验结果 | 第47-53页 |
| ·益智仁神经活性成分PCA的结构鉴定 | 第47-50页 |
| ·PCA对PC12细胞的毒性作用 | 第50-51页 |
| ·PCA对H_2O_2损伤PC12细胞的保护作用 | 第51-52页 |
| ·PCA对Glu诱导的PC12细胞损伤的保护作用 | 第52-53页 |
| ·PCA对MPP~+介导的PC12细胞损伤的保护作用 | 第53页 |
| ·讨论 | 第53-55页 |
| ·小结 | 第55-56页 |
| 4.PCA对H_2O_2损伤PC12细胞的保护作用 | 第56-68页 |
| ·实验材料及设备 | 第56-57页 |
| ·试剂 | 第56-57页 |
| ·仪器 | 第57页 |
| ·实验方法 | 第57-60页 |
| ·细胞培养 | 第57页 |
| ·乳酸脱氢酶的测定 | 第57-58页 |
| ·细胞的形态学观察 | 第58页 |
| ·DNA含量的分析 | 第58页 |
| ·谷胱甘肽含量测定 | 第58页 |
| ·超氧化物歧化酶的检测 | 第58-59页 |
| ·过氧化氢酶的检测 | 第59页 |
| ·谷胱甘肽过氧化物酶的检测 | 第59页 |
| ·蛋白质含量的测定 | 第59页 |
| ·统计学处理 | 第59-60页 |
| ·实验结果 | 第60-66页 |
| ·PCA对H_2O_2损伤致细胞内LDH漏出的影响 | 第60-61页 |
| ·PCA对H_2O_2损伤诱导的PC12细胞凋亡的保护作用 | 第61-63页 |
| ·PCA对H_2O_2损伤致细胞内GSH含量变化的影响 | 第63-64页 |
| ·PCA对H_2O_2损伤致细胞内抗氧化酶活性变化的影响 | 第64页 |
| ·PCA对H_2O_2／Fe~(2+)介导的PC12细胞损伤的保护作用 | 第64-66页 |
| ·讨论 | 第66-67页 |
| ·小结 | 第67-68页 |
| 5.PCA对Mpp~+介导的PC12细胞凋亡的保护作用 | 第68-84页 |
| ·实验材料及设备 | 第68-70页 |
| ·试剂 | 第68-69页 |
| ·仪器 | 第69-70页 |
| ·实验方法 | 第70-73页 |
| ·细胞培养 | 第70页 |
| ·乳酸脱氢酶的测定 | 第70页 |
| ·细胞的形态学观察 | 第70页 |
| ·DNA含量的分析 | 第70页 |
| ·AnnexinV-PI双染检测细胞凋亡和坏死 | 第70-71页 |
| ·超氧化物歧化酶的检测 | 第71页 |
| ·过氧化氢酶的检测 | 第71页 |
| ·谷胱苷肽过氧化物酶的检测 | 第71页 |
| ·线粒体膜电位的检测 | 第71页 |
| ·活性氧的检测 | 第71-72页 |
| ·谷胱甘肽含量测定 | 第72页 |
| ·Caspase-3活性分析 | 第72页 |
| ·Bcl-2和Bax蛋白分析 | 第72页 |
| ·蛋白质含量的测定 | 第72页 |
| ·统计学处理 | 第72-73页 |
| ·实验结果 | 第73-81页 |
| ·PCA对Mpp~+介导的PC12细胞内LDH漏出的影响 | 第73页 |
| ·PCA对Mpp~+介导的PC12细胞凋亡的保护作用 | 第73-76页 |
| ·PCA对Mpp~+介导的PC12细胞内抗氧化酶活性变化的影响 | 第76页 |
| ·PCA对MPP~+介导的PC12细胞线粒体膜电位变化的影响 | 第76-78页 |
| ·PCA对MPP~+介导的PC12细胞ROS产生的影响 | 第78页 |
| ·PCA对MPP~+介导的PC12细胞GSH含量变化的影响 | 第78-79页 |
| ·PCA对Mpp~+介导的PC12细胞caspase-3活性变化的影响 | 第79-80页 |
| ·PCA对Mpp~+介导的PC12细胞Bcl-2和Bax蛋白表达的影响 | 第80-81页 |
| ·讨论 | 第81-83页 |
| ·小结 | 第83-84页 |
| 6.结论与展望 | 第84-86页 |
| ·主要结论 | 第84页 |
| ·开发前景的展望与本论文存在的不足及有待于进一步完成的工作 | 第84-86页 |
| 参考文献 | 第86-105页 |
| 攻读博士学位期间发表学术论文情况 | 第105-106页 |
| 创新点摘要 | 第106-107页 |
| 致谢 | 第107-108页 |
| 大连理工大学学位论文版权使用授权书 | 第108页 |
