| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-8页 |
| 引言 | 第8-10页 |
| 1 ATPase与植物抗盐性研究进展 | 第10-18页 |
| 1．1 ATPase种类与类型 | 第10-11页 |
| 1．2 ATPase在植物抗盐性中的作用 | 第11-12页 |
| 1．3 盐胁迫对ATPase活性的影响 | 第12-13页 |
| 1．3．1 盐胁迫强度和时间与ATPase活性 | 第12页 |
| 1．3．2 盐胁迫下膜稳定性及膜脂组成变化与ATPase活性 | 第12-13页 |
| 1．4 ATPase活性调控的分子机制 | 第13-16页 |
| 1．4．1 ATPase蛋白亚基组成以及物种特异性 | 第13-14页 |
| 1．4．2 盐胁迫下ATPase亚基以及蛋白构象变化 | 第14-16页 |
| 1．4．3 盐胁迫下ATPase基因表达 | 第16页 |
| 1．5 盐胁迫信号转导与ATPase活性调控 | 第16-17页 |
| 1．6 小结 | 第17-18页 |
| 2 盐胁迫下细胞质膜与液泡膜ATPase活性变化 | 第18-28页 |
| 2．1 材料和方法 | 第19页 |
| 2．1．1 植物材料的培养与盐处理 | 第19页 |
| 2．1．2 细胞ATPase的电镜观察： | 第19页 |
| 2．2 结果分析 | 第19-20页 |
| 2．2．1 盐处理后胡杨叶肉细胞ATPase定位及活性的变化 | 第19-20页 |
| 2．2．2 盐处理后Ⅰ-214杨叶肉细胞ATPase定位及活性的变化 | 第20页 |
| 2．2．3 对照反应 | 第20页 |
| 2．3 讨论 | 第20-28页 |
| 3 盐胁迫下杨树根叶细胞的离子区隔化 | 第28-43页 |
| 3．1 材料与方法 | 第29页 |
| 3．1．1 植物材料的培养及盐处理 | 第29页 |
| 3．1．2 电镜样品的制备 | 第29页 |
| 3．1．3 光学显微照相 | 第29页 |
| 3．1．4 透射电镜能谱分析的测定 | 第29页 |
| 3．2 结果分析： | 第29-35页 |
| 3．2．1 光学显微照相 | 第29-30页 |
| 3．2．2 盐胁迫下根细胞离子含量的测定 | 第30-33页 |
| 3．2．3 盐胁迫下叶片细胞离子含量的测定 | 第33-35页 |
| 3．3 讨论 | 第35-43页 |
| 4 初始和长期盐胁迫下叶绿体ATPase活性动态变化及其调控 | 第43-51页 |
| 4．1 材料与方法 | 第44-45页 |
| 4．1．1 苗木的培养与短期盐处理 | 第44页 |
| 4．1．2 苗木的培养与长期盐处理 | 第44页 |
| 4．1．3 苗木培养与抑制剂和盐处理 | 第44页 |
| 4．1．4 组织ATPase活性的测定 | 第44-45页 |
| 4．2 结果分析 | 第45-49页 |
| 4．2．1 短期效应(salt-shock)(1-24h) | 第45-46页 |
| 4．2．1．1 ATPase活性的变化 | 第45页 |
| 4．2．1．2 Ca~(2+)-ATPase活性的变化 | 第45-46页 |
| 4．2．2 长期效应(salt-adaptation)(1-29d) | 第46页 |
| 4．2．2．1 ATPase活性的变化 | 第46页 |
| 4．2．2．2 Ca~(2+)-ATPase活性的变化 | 第46页 |
| 4．2．3 抑制剂对叶绿体ATPase活性的影响 | 第46-49页 |
| 4．2．3．1 抑制剂对胡杨酶活性的影响 | 第46页 |
| 4．2．3．2 抑制剂对群众杨酶活性的影响 | 第46-49页 |
| 4．3 讨论 | 第49-51页 |
| 5 总结 | 第51-53页 |
| 参考文献 | 第53-62页 |
| 个人简介 | 第62页 |
| 硕士期间发表论文 | 第62-63页 |
| 导师简介 | 第63-64页 |
| 致谢 | 第64页 |
