| 摘要 | 第1-9页 |
| Abstract | 第9-13页 |
| 第1章 文献综述 | 第13-29页 |
| 1 蚌类区系与生物多样性 | 第14-16页 |
| ·蚌类的区系特点 | 第14-15页 |
| ·蚌类区系与生物多样性 | 第15-16页 |
| 2 蚌类形态分类的研究进展 | 第16-18页 |
| ·贝壳形态特征在分类中的应用 | 第16-17页 |
| ·软体部形态特征在分类中的应用 | 第17-18页 |
| ·钩介幼虫及繁殖生物学在分类中的应用 | 第18页 |
| 3 遗传标记及其在双壳类遗传多样性和系统发育中的应用 | 第18-25页 |
| ·同工酶及其应用 | 第19-20页 |
| ·染色体组型及其应用 | 第20-21页 |
| ·DNA分子标记及其应用 | 第21-25页 |
| 4 我国蚌科的区系分类及遗传多样性研究现状 | 第25-27页 |
| 5 本研究的目的和意义 | 第27页 |
| 6 本研究的创新之处 | 第27-29页 |
| 第2章 淡水蚌类基因组DNA提取方法的比较 | 第29-40页 |
| 1 材料与方法 | 第30-33页 |
| ·样本采集 | 第30页 |
| ·试剂 | 第30页 |
| ·仪器 | 第30-31页 |
| ·基因组DNA的提取 | 第31-32页 |
| ·DNA浓度和纯度的测定 | 第32-33页 |
| ·DNA的电泳检测 | 第33页 |
| 2 结果与分析 | 第33-37页 |
| ·方法1与方法2提取基因组DNA的效果 | 第33-35页 |
| ·不同组织提取基因组DNA效果的比较 | 第35页 |
| ·消化时间和蛋白酶K用量对提取DNA的影响 | 第35-37页 |
| 3 讨论 | 第37-40页 |
| ·方法1与方法2在淡水蚌类基因组DNA提取中的适用性 | 第37-38页 |
| ·淡水蚌类基因组DNA提取的适合软体组织和及其消化条件 | 第38-39页 |
| ·淡水蚌类基因组DNA提取中应注意的事项 | 第39-40页 |
| 第3章 淡水蚌类RAPD反应条件的优化 | 第40-54页 |
| 1 材料与方法 | 第41-45页 |
| ·样本采集 | 第41页 |
| ·试剂和仪器 | 第41-42页 |
| ·DNA的提取 | 第42-43页 |
| ·基因组DNA的RAPD扩增 | 第43-45页 |
| ·扩增产物检测 | 第45页 |
| 2 结果与讨论 | 第45-54页 |
| ·提取DNA的质量 | 第45-46页 |
| ·随机引物的筛选结果 | 第46页 |
| ·模板DNA浓度对RAPD扩增的影响 | 第46-47页 |
| ·Taq DNA聚合酶浓度对RAPD扩增的影响 | 第47-49页 |
| ·Mg~(2+)浓度对RAPD扩增的影响 | 第49页 |
| ·引物浓度对RAPD扩增的影响 | 第49-50页 |
| ·dNTPs浓度对RAPD扩增的影响 | 第50-51页 |
| ·退火温度对RAPD扩增的影响 | 第51页 |
| ·延伸温度及其它因素对RAPD扩增的影响 | 第51-52页 |
| ·淡水蚌类的优化RAPD反应条件 | 第52-54页 |
| 第4章 蚌科的遗传多样性和系统发育的RAPD分析 | 第54-98页 |
| 1 材料和方法 | 第55-59页 |
| ·样本采集 | 第55页 |
| ·试剂和仪器 | 第55-57页 |
| ·基因组DNA的提取 | 第57页 |
| ·RAPD扩增 | 第57-58页 |
| ·数据分析 | 第58-59页 |
| 2 结果 | 第59-92页 |
| ·引物筛选结果 | 第59-66页 |
| ·褶纹冠蚌不同地理群体的RAPD扩增结果及其遗传多样性 | 第66-70页 |
| ·无齿蚌属和蛏蚌属6个种群的RAPD扩增结果及遗传多样性 | 第70-76页 |
| ·丽蚌属4个种群的RAPD扩增结果及遗传多样性 | 第76-81页 |
| ·珠蚌亚科其余8个种群的RAPD扩增结果及遗传多样性 | 第81-87页 |
| ·中国蚌科21个类群系统发育的RAPD分析 | 第87-92页 |
| 3 讨论 | 第92-98页 |
| ·褶纹冠蚌3个地理群体的遗传多样性与地理分化 | 第92页 |
| ·蚌科类群的遗传多样性及其资源保护和持续利用 | 第92-93页 |
| ·蚌科的系统发育 | 第93-94页 |
| ·关于丽蚌属的划分及分类位置 | 第94-95页 |
| ·关于无齿蚌属几个种类的分类地位 | 第95-96页 |
| ·关于扭蚌2个表型群体的关系 | 第96页 |
| ·蛏蚌属的分类位置 | 第96页 |
| ·帆蚌属及冠蚌属的分类位置 | 第96-98页 |
| 第5章 蚌科rDNA ITS1序列变异及系统发育分析 | 第98-147页 |
| 1 材料与方法 | 第99-104页 |
| ·实验材料 | 第99-100页 |
| ·试剂和仪器 | 第100页 |
| ·基因组DNA的提取 | 第100页 |
| ·ITS1的PCR扩增和序列测定 | 第100-103页 |
| ·ITS1的PCR引物 | 第101页 |
| ·PCR反应条件的优化与ITS1片段的PCR扩增 | 第101-102页 |
| ·PCR产物的纯化与回收 | 第102页 |
| ·ITS1的序列测定 | 第102-103页 |
| ·数据分析 | 第103-104页 |
| ·ITS1的序列比对 | 第103页 |
| ·ITS1序列的核苷酸组成分析 | 第103页 |
| ·系统发育分析 | 第103-104页 |
| 2 结果与分析 | 第104-144页 |
| ·PCR反应条件的优化结果 | 第104-109页 |
| ·中国蚌科不同类群rDNA ITS1的PCR扩增结果 | 第109-110页 |
| ·不同类群rDNA ITS1的核苷酸组成及序列长度 | 第110-113页 |
| ·系统发育分析 | 第113-144页 |
| 3 讨论 | 第144-147页 |
| ·中国蚌科的系统发育 | 第144页 |
| ·关于丽蚌属的划分及分类位置 | 第144-145页 |
| ·关于无齿蚌属不同类群的序列差异 | 第145页 |
| ·蛏蚌属的分类位置 | 第145页 |
| ·帆蚌属及冠蚌属的分类位置 | 第145-147页 |
| 第6章 蚌科的形态变异与判别分析 | 第147-166页 |
| 1 材料和方法 | 第147-149页 |
| ·材料 | 第147页 |
| ·蚌的形态指标及测定 | 第147-149页 |
| ·统计分析 | 第149页 |
| 2 结果与分析 | 第149-163页 |
| ·无齿蚌属、冠蚌属、帆蚌属9种蚌14个种群的形态度量学分析 | 第149-154页 |
| ·主成分分析 | 第149-151页 |
| ·聚类分析 | 第151-152页 |
| ·判别分析 | 第152-154页 |
| ·珠蚌亚科8个属20个种群的形态度量学分析 | 第154-159页 |
| ·珠蚌亚科8个属16种20个种群的聚类分析 | 第154页 |
| ·珠蚌亚科6个属13种16个种群的主成分分析 | 第154-157页 |
| ·珠蚌亚科6个属16个种群的判别分析 | 第157-159页 |
| ·扭蚌属、矛蚌属和蛏蚌属5个种群的形态度量学分析 | 第159-162页 |
| ·主成分分析 | 第159-161页 |
| ·判别分析 | 第161-162页 |
| ·蚌科25种33个蚌类种群的聚类分析 | 第162-163页 |
| 3 讨论 | 第163-166页 |
| ·关于蚌科的形态变异 | 第163-164页 |
| ·蚌科的形态变异与系统发育的关系 | 第164-166页 |
| 参考文献 | 第166-184页 |
| 致谢 | 第184页 |
