致谢 | 第1-5页 |
内容提要 | 第5-6页 |
英文提要 | 第6-7页 |
1 前言 | 第7-20页 |
1.1 概述 | 第7-8页 |
1.2 固氮蓝细菌的一般特征 | 第8-10页 |
1.3 固氮蓝细菌与植物人工联合的研究进展 | 第10-19页 |
1.3.1 固氮蓝细菌与植物共生固氮体系的建立 | 第12-16页 |
1.3.1.1 共生体早期识别 | 第12页 |
1.3.1.2 共生的开始 | 第12-15页 |
1.3.1.3 共生体功能上的联系 | 第15-16页 |
1.3.2 与共生相关的基因 | 第16-18页 |
1.3.2.1 共生蓝细菌的基因组多态性研究 | 第16-18页 |
1.3.2.2 共生相关基因组的研究 | 第18页 |
1.3.3 人工诱导蓝细菌进入植物的方法 | 第18-19页 |
1.3.3.1 诱导固氮蓝细菌进入植物的原生质体法 | 第18-19页 |
1.3.3.2 固氮蓝细菌与植物共培养 | 第19页 |
1.4 研究目的与意义 | 第19-20页 |
2 材料与方法 | 第20-25页 |
2.1 供试材料及培养条件 | 第20页 |
2.2 药品、试剂与仪器 | 第20-22页 |
2.2.1 药品与试剂 | 第20-22页 |
2.2.2 仪器 | 第22页 |
2.3 方法 | 第22-25页 |
2.3.1 藻种的活化 | 第22页 |
2.3.2 模板DNA的制备 | 第22页 |
2.3.3 蓝细菌16SrRNA、16S-23SrRNA PCR扩增 | 第22-24页 |
2.3.4 PCR产物的酶切 | 第24页 |
2.3.5 小麦的播种与催芽 | 第24页 |
2.3.6 小麦与蓝细菌的共培养条件 | 第24页 |
2.3.7 被小麦根系吸附的蓝细菌叶绿素含量测定 | 第24页 |
2.3.8 小麦幼苗生长参数的测定 | 第24页 |
2.3.9 蓝细菌氨基酸测定 | 第24页 |
2.3.10 共生蓝细菌的形态变化观察 | 第24-25页 |
2.3.11 实验数据的处理 | 第25页 |
3 结果与分析 | 第25-38页 |
3.1 23种蓝细菌品系的分子鉴定 | 第25-31页 |
3.1.1 23种蓝细菌的16SrRNA-PCR与酶切 | 第25-27页 |
3.1.1.1 蓝细菌16SrRNA-PCR的引物筛选 | 第25页 |
3.1.1.2 23种蓝细菌16SrRNA-PCR与酶切 | 第25-27页 |
3.1.1.3 基于16SrRNA的PCR-RFLP分析的蓝细菌的类群组 | 第27页 |
3.1.2 23种蓝细菌的16S-23SrRNA-PCR与酶切 | 第27-31页 |
3.1.2.1 23种蓝细菌的16S-23SrRNA-PCR | 第27-29页 |
3.1.2.2 23种蓝细菌的16S-23SrRNA-PCR产物的RFLP | 第29页 |
3.1.2.3 基于16S-23SrRNA的PCR-RFLP分析的蓝细菌的类群组 | 第29-31页 |
3.2 固氮蓝细菌与小麦幼苗共培养结果 | 第31-38页 |
3.2.1 共培养的固氮蓝细菌对小麦幼苗的促长效果 | 第31页 |
3.2.2 不同蓝细菌对小麦幼苗根系的吸附力比较 | 第31-34页 |
3.2.3 共培养蓝细菌的氨基酸分析 | 第34-35页 |
3.2.4 不同蓝细菌的形态变化 | 第35-38页 |
3.2.4.1 不同处理的蓝细菌异形胞发生和位置变化 | 第35-37页 |
3.2.4.2 不同处理对藻殖段形成的影响 | 第37-38页 |
4 讨论 | 第38-46页 |
4.1 23种蓝细菌分类位置的分子鉴定 | 第38-41页 |
4.1.1 运用16SrRNA的分子鉴定 | 第38-39页 |
4.1.2 运用16S-23SrRNA的分子鉴定 | 第39-41页 |
4.2 固氮蓝细菌对小麦幼苗的促长作用 | 第41页 |
4.3 蓝细菌对小麦幼苗根系的吸附能力 | 第41-42页 |
4.4 固氮蓝细菌与小麦幼苗共培养的机理探讨 | 第42-46页 |
4.4.1 蓝细菌氨基酸组成及含量与促长作用的关系 | 第42-44页 |
4.4.2 共培养条件与蓝细菌异形胞的分化的关系 | 第44-45页 |
4.4.3 共培养条件与蓝细菌藻殖段的分化的关系 | 第45-46页 |
5 小结 | 第46-48页 |
参考文献 | 第48-58页 |
附图 | 第58-64页 |
中文摘要 | 第64-66页 |