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人集缩素SMC蛋白在有丝分裂染色体集缩和分离中的作用研究

中文摘要第1-6页
英文摘要第6-15页
前言第15-48页
 一、 关于有丝分裂染色体集缩的研究第15-19页
  1 组蛋白在染色体集缩中的作用第16-18页
  2 TopoⅡ在染色体集缩中的作用第18-19页
 二、 染色体结构维持蛋白第19-28页
  1 SMC蛋白的发现第20-21页
  2 、 SMC蛋白的结构特点第21-22页
  3 SMC蛋白的分类第22-23页
  4 SMC蛋白的功能第23-26页
  5 原核SMC蛋白第26-28页
 三、 SMC蛋白在染色体集缩中的作用第28-32页
 四、 SMC蛋白在有丝分裂染色体集缩中的可能作用机制第32-37页
 五、 人集缩素的相关研究第37-40页
 六、 RNA干涉技术和基因转导技术以及共转染技术第40-42页
 七、 本研究的目的意义第42-48页
  实验材料第46页
  1 细胞第46页
  2 标准品第46页
  3 培养基和血清第46页
  4 质粒第46页
  5 菌株第46页
  6 工具酶第46页
  7 成套试剂第46-47页
  8 主要仪器第47-48页
实验方法第48-64页
 一、 HeLa细胞培养第48页
 二、 HeLa细胞总RNA的提取第48-49页
 三、 逆转录(RT,Reverse Transcription)反应第49页
 四、 PCR反应第49-52页
  1 PCR引物第49-51页
   (1) 克隆hCAP-E的C-末端序列所用引物第50页
   (2) 克隆hCAP-C的C-末端序列所用引物第50页
   (3) 附加Kozak序列和附加核定位信号引物第50-51页
   (4) 附加Kozak序列和附加核定位信号的GFP引物第51页
   (5) 中间克隆载体pUCm-T插入位点上游5′端引物第51页
  2 PCR扩增第51-52页
 五、 从凝胶中纯化回收目的片段第52页
 六、 中间克隆质粒的构建第52-55页
  (1) 感受态宿主菌的制备第52-53页
  (2) 连接反应第53页
  (3) 转化第53页
  (4) 重组质粒的鉴定第53-55页
   ① 重组质粒小量提取(碱裂解法)第53-54页
   ② 重组质粒的电泳检测第54页
   ③ 重组质粒的纯度与浓度测定第54页
   ④ 重组质粒的酶切鉴定第54页
   ⑤ 重组质粒方向和PCR鉴定第54-55页
   ⑥ 重组质粒DNA序列测定第55页
 七、 真核表达质粒的构建第55-56页
  (1) 限制性酶切位点分析第55-56页
  (2) 目的片段的制备第56页
  (3) 真核表达载体pcDNA3.1(-)的制备第56页
  (4) 连接反应第56页
  (5) 重组质粒的转化和鉴定第56页
 八、 RNA干涉(RNAi)质粒的构建第56-58页
  (一) cDNA编码区的选择第56-57页
  (二) 寡核苷酸的设计第57页
  (三) 将寡核苷酸片段亚克到pBS/U6载体上第57-58页
   1 寡核苷酸片段的退火第57-58页
   2 载体的准备第58页
   3 连接第58页
   4 重组质粒的转化和鉴定第58页
  (四) 将寡核苷酸片段亚克隆到RNAi载体pREP4-PUR上第58页
 九、 重组质粒的大量制备第58-60页
  (一) 试剂第58-59页
  (二) 操作步骤第59-60页
 十、 Superfect转染程序第60-61页
 十一、 转染后细胞的检测第61-64页
  1 荧光显微镜观察第61页
   (1) 用Hoechest33342对转染后活细胞的DNA进行染色标记第61页
   (2) 荧光显微镜观察第61页
  2 、 RT-PCR检测第61-64页
   (1) 转染后Hela细胞RNA的提取第62页
   (2) 逆转录(RT)反应第62-63页
   (3) RT-PCR反应第63-64页
结果与分析第64-96页
 一、 人集缩素SMC亚基hCAP-E和hCAP-C的C-末端真核表达质粒pcDNA 3.1+KNE和pcDNA 3.1+KNC的构建第64-75页
  1 Hela细胞总RNA2%甲醛变性琼脂糖凝胶电泳结果第65页
  2 hCAP-E的C末端的真核表达质粒p PcDNA3.1+KNE构建第65-70页
   (1) hCAP-E的C末端的RT-PCR扩增第65-66页
   (2) 中间克隆质粒T+HEC的构建第66页
   (3) 中间克隆质粒T+HEC的DNA序列测定第66-67页
   (4) 中间克隆质粒T+ExHCP-1的构建第67-68页
   (5) 间克隆质粒T+KNE的构建第68-69页
   (6) 中间克隆质粒T+KNE质粒的DNA序列测定第69页
   (7) 真核表达质粒pcDNA 3.1+KNE的构建第69-70页
  3 HCAP-C的C末端的真核表达质粒pcDNA 3.1+KNC的构建第70-75页
   (1) HCAP-C的C末端的RT-PCR扩增第70-71页
   (2) 中间克隆质粒T+HCT-1的构建第71-72页
   (3) 中间克隆质粒T+HCT-1的序列测定第72-73页
   (4) 中间克隆质粒T+KNC的构建第73页
   (5) 真核表达质粒pcDNA 3.1+KNC的构建第73-74页
   (6) 真核表达质粒pcDNA 3.1+KNC的序列测定第74-75页
 二、 附加Kozac序列和核定位信号的GFP真核表达质粒pcDNA 3.1+KG的构建第75-78页
  1 中间克隆质粒T+KG的构建第76页
  2 真核表达质粒pcDNA 3.1+KG的构建第76-77页
  3 真核表达质粒pcDNA 3.1+KG的序列测定第77-78页
 三、 人集缩素SMC亚基hCAP-E和hCAP-C特异的RNAi质粒的构建第78-80页
  (一) cDNA编码区的选择第79页
  (二) 寡核苷酸的设计第79页
  (三) 目的RNAi质粒的鉴定第79-80页
 四、 真核细胞转染体系的建立第80-82页
  1 重组质粒的大量制备第80-81页
  2 核定位信号的有效性第81-82页
  3 转染真核表达质粒pcDNA3.1+KG的细胞形态第82页
 五、 转染人集缩素SMC亚基hCAP-E和hCAP-CC-末端的作用分析第82-88页
  1 转染人集缩素SMC亚基hCAP-E的C-末端真核表达质粒pcDNA3.1+KNE导致Hela细胞表现多核和染色质桥现象第83-86页
   (1) 转染后细胞的形态变化第83-84页
   (2) 转染后Hela细胞的RT-PCR检测第84-86页
  2 转染人集缩素SMC亚基hCAP-C的C-末端真核表达质粒pcDNA3.1+KNC导致细胞表现有丝分裂染色体不分开现象第86-88页
   (1) 转染后细胞的形态变化第86-87页
   (2) 转染后细胞的RT-PCR检测第87-88页
 六、 转染人集缩素SMC亚基hCAP-E和hCAP-C特异的RNAi质粒RHE和RHC导致Hela细胞表现有丝分裂染色体不分开现象第88-96页
  1 人集缩素SMC亚基hCAP-E特异的RNAi质粒RHE导致Hela细胞表现有丝分裂染色体不分开现象第88-91页
   (1) 转染后细胞的形态变化第88-90页
   (2) 转染后细胞的RT-PCR检测第90-91页
  2 转染人集缩素SMC亚基hCAP-C特异的RNAi质粒RHC导致Hela细胞表现有丝分裂染色不分开现象第91-94页
   (1) 转染后细胞的形态变化第91-93页
   (2) 转染后细胞的RT-PCR检测第93-94页
  3 共转染人集缩素SMC亚基hCAP-E和hCAP-C特异的RNAi质粒RHE和RHC和pcDNA3.1+KG导致Hela细胞表现染色质桥现象第94-96页
讨论第96-104页
 一、 RNAi下调人集缩素SMC亚基hCAP-E和hCAP-C表达的结果分析第96-98页
 二、 转染人集缩素SMC亚基hCAP-E和hCAP-CC-末端的作用分析第98-100页
 三、 研究基因功能的共转染体系的建立第100-102页
 四、 人集缩素SMC亚基C-末端真核表达构建的策略第102-104页
结论第104-105页
本论文的主要的创新点第105-106页
参考文献第106-123页
致谢第123-124页
作者简历第124页

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