中文摘要 | 第1-4页 |
英文摘要 | 第4-7页 |
第1章 绪论 | 第7-15页 |
1.1 生物传感器 | 第7-9页 |
1.1.1 生物传感器的基本结构及发展 | 第7-8页 |
1.1.2 生物传感器的特点及其分类 | 第8-9页 |
1.2 光纤传感器 | 第9-11页 |
1.2.1 光纤及光纤传感的特点 | 第9-10页 |
1.2.2 光纤传感原理 | 第10-11页 |
1.3 胆固醇生物传感器的研究概况 | 第11-13页 |
1.4 论文研究的目的、意义及主要内容 | 第13-15页 |
第2章 固定化胆固醇氧化酶(COD)的酶膜制备研究 | 第15-31页 |
2.1 生物传感膜 | 第15-18页 |
2.1.1 生物传感膜的分类 | 第15-16页 |
2.1.2 生物传感膜的特点 | 第16-17页 |
2.1.3 生物传感膜的制备方法 | 第17-18页 |
2.2 酶的固定化 | 第18-20页 |
2.2.1 固定化酶的特点 | 第18-19页 |
2.2.2 酶的固定化方法 | 第19-20页 |
2.3 酶固定用薄膜的制备及其固定化酶研究 | 第20-31页 |
2.3.1 仪器与试剂 | 第21页 |
2.3.2 固定化胆固醇酶膜活力的测试方法 | 第21页 |
2.3.3 倾注法制备醋酸纤维素酶膜 | 第21-24页 |
2.3.4 盐析法制备醋酸纤维素酶膜 | 第24-27页 |
2.3.5 溶胶-凝胶薄膜的制备及其固定COD研究 | 第27-31页 |
第3章 影响固定化胆固醇氧化酶(COD)酶膜活性因素的研究 | 第31-41页 |
3.1 醋酸纤维素薄膜的特性对固定化胆固醇氧化酶活性的影响 | 第31-35页 |
3.1.1 酶促反应的动力学 | 第32-33页 |
3.1.2 薄膜厚度对酶活性的影响 | 第33-34页 |
3.1.3 薄膜的孔隙率和孔隙连通性对酶膜活力的影响 | 第34-35页 |
3.2 固定化条件对固定化胆固醇氧化酶活性的影响 | 第35-38页 |
3.2.1 预氧化的作用 | 第35-37页 |
3.2.2 戊二醛的影响 | 第37页 |
3.2.3 最佳的给酶量 | 第37-38页 |
3.3 反应条件对固定化胆固醇氧化酶活性的影响 | 第38-41页 |
3.3.1 温度的影响 | 第39页 |
3.3.2 pH值的影响 | 第39-41页 |
第4章 荧光试剂的制备、特性及应用研究 | 第41-50页 |
4.1 荧光的产生及其猝灭 | 第42-43页 |
4.1.1 荧光的产生 | 第42页 |
4.1.2 荧光的猝灭 | 第42-43页 |
4.2 钌Ⅱ-邻菲咯啉的制备及其特性研究 | 第43-47页 |
4.2.1 实验方法 | 第43页 |
4.2.2 Ru(phen)_3Cl_2的合成 | 第43-44页 |
4.2.3 Ru(phen)_3Cl_2的表征 | 第44-45页 |
4.2.4 Ru(phen)_3Cl_2的特性研究 | 第45-47页 |
4.3 荧光试剂薄膜制备研究 | 第47-50页 |
4.3.1 Ru(phen)_3Cl_2荧光试剂薄膜的制备 | 第48页 |
4.3.2 荧光试剂的氧猝灭性能研究 | 第48-49页 |
4.3.3 小结 | 第49-50页 |
第5章 荧光式光纤生物传感装置的设计及应用研究 | 第50-60页 |
5.1 荧光式光纤生物传感器的测量原理 | 第51-52页 |
5.1.1 胆固醇测量原理 | 第51页 |
5.1.2 荧光猝灭原理 | 第51-52页 |
5.2 材料制备 | 第52-53页 |
5.2.1 测试仪器及实验方法 | 第52页 |
5.2.2 醋酸纤维素薄膜的制备 | 第52页 |
5.2.3 胆固醇氧化酶(COD)的固定 | 第52-53页 |
5.2.4 荧光试剂薄膜的制备 | 第53页 |
5.3 荧光式光纤生物传感装置的设计 | 第53-55页 |
5.3.1 测试系统 | 第53-54页 |
5.3.2 光纤探头固定 | 第54-55页 |
5.4 荧光式光纤生物传感装置的应用 | 第55-60页 |
5.4.1 气体氧含量的测定 | 第55-56页 |
5.4.2 溶解氧含量的测定、标准胆固醇溶液和血浆溶液的测试 | 第56-59页 |
5.4.3 传感装置的响应时间 | 第59页 |
5.4.4 传感装置的稳定性 | 第59-60页 |
第6章 结论 | 第60-61页 |
参考文献 | 第61-64页 |
致谢 | 第64-65页 |
攻读学位期间已发表和待发表的论文 | 第65页 |