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牛耳草光合作用的脱水保护和复苏机理

中文摘要第1-9页
英文摘要第9-11页
缩写第11-12页
1 复苏被子植物的光合作用和耐脱水机制的研究进展第12-32页
 1.1 复苏植物的概念和研究历史第12-13页
  1.1.1 复苏植物的概念第12页
  1.1.2 复苏植物的研究历史第12-13页
 1.2 复苏植物的种类和分布第13页
 1.3 复苏被子植物光合作用的研究进展第13-19页
  1.3.1 脱水和复水过程中复苏被子植物叶绿体结构和色素组成的变化第16-17页
  1.3.2 脱水和复水过程中复苏被子植物的光合作用变化第17-18页
  1.3.3 脱水复水过程中复苏被子植物光合机构的光保护作用第18-19页
 1.4 复苏植物耐脱水机制的研究进展第19-29页
  1.4.1 复苏植物脱水复水过程中的结构变化第19页
  1.4.2 复苏植物脱水复水时的生理生化变化第19-21页
   1.4.2.1 光合作用变化第19页
   1.4.2.2 呼吸作用变化第19-20页
   1.4.2.3 保护物质含量的变化第20-21页
   1.4.2.4 细胞损伤第21页
  1.4.3 复苏植物耐脱水的分子机制第21-29页
   1.4.3.1 脱水诱导的基因表达第22-25页
   1.4.3.2 基因表达的调控与信号传导第25-29页
 1.5 本实验室的研究积累第29-30页
 1.6 复苏植物耐脱水保护机制研究中存在的问题第30-32页
2. 研究目的第32-33页
3. 材料与方法第33-46页
 3.1 植物材料第33页
 3.2 实验方法第33-46页
  3.2.1 相对含水量测定第33页
  3.2.2 叶片快速荧光诱导动力学的测定第33页
  3.2.3 DTT处理第33页
  3.2.4 磷酸盐处理第33-34页
   3.2.4.1 用于叶绿素a快速荧光诱导动力学的测定第33-34页
   3.2.4.2 用于光系统Ⅱ光化学活性及抗氧化剂和蔗糖含量的测定第34页
  3.2.5 叶绿素a荧光参数的测定第34页
  3.2.6 光合色素的提取和分析第34-35页
  3.2.7 蔗糖含量的测定第35-36页
  3.2.8 维生素C含量的测定第36页
  3.2.9 谷胱甘肽含量的测定第36-37页
  3.2.10 离子渗漏的测定第37页
  3.2.11 RNA的提取第37-38页
   3.2.11.1 提取试剂的准备第37-38页
   3.2.11.2 Total RNA的提取第38页
   3.2.11.3 Total RNADNA酶Ⅰ的酶切消化第38页
  3.2.12 mRNA差异显示第38-40页
   3.2.12.1 逆转录第39页
   3.2.12.2 PCR第39-40页
  3.2.13 特异带的扩增,克隆和测序第40-43页
   3.2.13.1 目的片段的纯化第41页
   3.2.13.2 目的片段的克隆第41-43页
   3.2.13.3 目的序列的测定和分析第43页
  3.2.14 特异片段的Northern杂交检测第43-46页
4 结果与讨论第46-82页
 4.1 牛耳草脱水复水期间叶黄素循环的保护作用第46-48页
  4.1.1 n叶绿素a荧光参数变化第46页
  4.1.2 叶黄素循环色素含量变化第46-47页
  4.1.3 讨论第47-48页
 4.2 不同浓度的磷酸盐处理对脱水复苏过程中牛耳草叶片叶绿素a的快速荧光诱导动力学的影响第48-52页
  4.2.1 整叶第48-50页
  4.2.2 叶圆片第50-52页
 4.3 磷酸盐对牛耳草脱水复水期间光系统Ⅱ光化学效率和抗氧化剂、蔗糖的影响第52-58页
  4.3.1 牛耳草叶片脱水复水期间相对含水量的变化第52-53页
  4.3.2 牛耳草叶片脱水复水过程中光系统Ⅱ光化学活性的变化第53-54页
  4.3.3 牛耳草脱水复水过程中AsA和GSH含量的变化第54-55页
  4.3.4 牛耳草脱水复水过程中蔗糖含量的变化第55-56页
  4.3.5 离子渗漏第56页
  4.3.6 讨论第56-58页
 4.4 牛耳草脱水复苏过程中基因表达的变化第58-74页
 4.5 脱水特异诱导的cDNA条带的克隆测序和基因库同源性比较第74-81页
 4.6 脱水特异诱导的cDNA序列的Northern Blot检测第81-82页
5. 结论与展望第82-84页
参考文献第84-97页
博士期间发表或提交的论文第97-98页
致谢第98页

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