| 中文摘要 | 第1-6页 |
| Abstract Effects and its Mechanism of EBSPTR therapy on Therapeutic angiogenesis in Rats hind limb ischemic models | 第6-8页 |
| 缩略语 | 第8-9页 |
| 文献综述 治疗性血管新生研究进展 | 第9-21页 |
| 1． 血管发生生物学的研究 | 第9页 |
| 2． 血管新生的基本过程 | 第9-10页 |
| 3． 治疗性血管新生概念的提出 | 第10-11页 |
| 4． 治疗性血管新生的诱导 | 第11-15页 |
| 5． 中医血管新生研究概况 | 第15-16页 |
| 参考文献 | 第16-21页 |
| 前言 | 第21-25页 |
| 参考文献 | 第23-25页 |
| 理论研究 | 第25页 |
| 第一章 祛瘀生新法的原始及其发展 | 第25-29页 |
| 一． 理论渊源于阴阳学说 | 第25-26页 |
| 二． 萌芽肇始于秦汉时期 | 第26页 |
| 三． 发展形成于明清 | 第26-29页 |
| 第二章 祛瘀生新法的临床应用 | 第29-31页 |
| 第三章 祛瘀生新促血管新生的理论基础 | 第31-35页 |
| 一． 祛瘀生新法具有理论上的普适性和临床应用的广泛性 | 第31页 |
| 二． 血管概念的古典表征 | 第31-32页 |
| 三． 血生络的可能机制 | 第32页 |
| 四． 祛瘀生络论 | 第32页 |
| 参考文献 | 第32-35页 |
| 实验研究一 傅氏生化汤提取剂对大鼠后肢缺血模型VEGF及其受体VEGFR2（FLK-1/KDR）基因表达的影响 | 第35页 |
| 材料与方法 | 第35-38页 |
| 1． 药品与试剂 | 第35-36页 |
| 2． 主要实验仪器 | 第36页 |
| 3． 动物模型复制及分组给药 | 第36页 |
| 4． 标本取材及冰冻切片 | 第36-37页 |
| 5． 检测原理 | 第37页 |
| 6． 检测方法与步骤 | 第37-38页 |
| 7． 图象分析与数据处理 | 第38页 |
| 结果 | 第38-39页 |
| 1． VEGFmRNA在各组大鼠骨骼肌组织切片中的表达及分布。 | 第38页 |
| 2． VEGFR2（FLK-1/KDR）mRNA在各组大鼠骨骼肌组织切片中的表达及分布。 | 第38-39页 |
| 讨论 | 第39-42页 |
| 参考文献 | 第40-42页 |
| 实验研究二 傅氏生化汤提取剂对大鼠缺血后肢组织CD34蛋白表达和微血管密度的影响 | 第42页 |
| 材料与方法 | 第42-44页 |
| 1． 试剂与药品 | 第42页 |
| 2． 动物模型复制与分组给药 | 第42-43页 |
| 3． 标本取材及组织切片 | 第43页 |
| 4． 免疫组织化学染色方法 | 第43-44页 |
| 5． 结果判定：CD34阳性表达为棕黄色。 | 第44页 |
| 结果 | 第44-46页 |
| 1． 组大鼠骨骼肌组织CD34免疫组化染色计算机图像分析结果 | 第44-45页 |
| 2． 各组大鼠骨骼肌组织免疫组化染色CD34抗原表达情况 | 第45页 |
| 3． 各组大鼠骨骼肌组织MVD见表3。 | 第45-46页 |
| 讨论 | 第46-48页 |
| 参考文献 | 第47-48页 |
| 讨论与结论 | 第48-49页 |
| 图像照片 | 第49-66页 |
| 致谢 | 第66页 |
