| 中文摘要 | 第1-8页 |
| 英文摘要 | 第8-13页 |
| 第一章 绪论 | 第13-47页 |
| ·丙型肝炎病毒 | 第13-16页 |
| ·HCV复制生活周期 | 第16页 |
| ·有功能的HCV基因组克隆 | 第16-19页 |
| ·体外细胞培养中HCV RNA的复制能力 | 第19-26页 |
| ·1型基因型分离株和复制系统 | 第19-20页 |
| ·1型复制子对体外细胞培养的适应性改变 | 第20-23页 |
| ·宿主细胞相容性 | 第23-24页 |
| ·支持HCV RNA复制的宿主细胞系的范围 | 第24-26页 |
| ·可在体外细胞培养中产生感染性病毒颗粒的HCV分子克隆 | 第26-28页 |
| ·HCV感染的动物模型 | 第28-33页 |
| ·HCV感染黑猩猩动物模型 | 第28-30页 |
| ·HCV感染的小动物模型 | 第30-33页 |
| ·治疗HCV感染的传统联合疗法及改进 | 第33-37页 |
| ·传统联合治疗方案的改进 | 第34页 |
| ·新型干扰素及干扰素诱导剂联合选择性病毒唑治疗 | 第34-37页 |
| ·HCV临床治疗新药的研究发展 | 第37-44页 |
| ·特定靶位的抑制剂 | 第37-42页 |
| ·免疫疗法----免疫调节制剂 | 第42-44页 |
| ·总结与展望 | 第44-45页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第45-47页 |
| 第二章 1b型HCV在Vero细胞培养体系中的大量扩增 | 第47-70页 |
| ·引言 | 第47页 |
| ·材料与方法 | 第47-62页 |
| ·材料 | 第47-51页 |
| ·方法 | 第51-62页 |
| ·结果 | 第62-67页 |
| ·重组痘病毒感染的浓度确定 | 第62-63页 |
| ·细胞转染试验条件的选择 | 第63-64页 |
| ·转染的Vero细胞中HCV RNA正负链检测 | 第64-65页 |
| ·转染的Vero细胞中HCV核酸复制的时效关系 | 第65页 |
| ·转染的Vero细胞中HCV蛋白的表达 | 第65-67页 |
| ·从细胞培养体系中获取的HCV病毒样颗粒的电镜观察 | 第67页 |
| ·讨论 | 第67-70页 |
| 第三章 HCVcc的感染性检测及树鼩动物感染模型的建立 | 第70-85页 |
| ·引言 | 第70页 |
| ·材料与方法 | 第70-74页 |
| ·材料 | 第70-72页 |
| ·方法 | 第72-74页 |
| ·结果 | 第74-82页 |
| ·HCVcc感染Huh7细胞中HCV RNA正负链检测 | 第74-75页 |
| ·HCVcc感染Huh7细胞中HCV RNA定量检测 | 第75页 |
| ·HCVcc感染Huh7细胞培养上清再感染 | 第75-77页 |
| ·HCVcc感染细胞中HCV功能蛋白的免疫荧光检测 | 第77页 |
| ·实验动物的挑选 | 第77-79页 |
| ·HCVcc及HCVcc感染Huh7细胞培养上清对树鼩的感染性 | 第79页 |
| ·HCVcc感染树鼩的肝组织样病理分析 | 第79-81页 |
| ·HCVcc感染树鼩肝组织中HCV RNA及蛋白检测 | 第81-82页 |
| ·讨论 | 第82-85页 |
| 第四章 蝎源抗菌肽的抗HCV感染研究 | 第85-102页 |
| ·引言 | 第85页 |
| ·材料与方法 | 第85-91页 |
| ·材料 | 第85-87页 |
| ·方法 | 第87-91页 |
| ·结果 | 第91-99页 |
| ·抗菌肽的细胞毒性 | 第91-92页 |
| ·抗菌肽对HCV感染的抑制 | 第92-93页 |
| ·Hp1090抑制HCV感染的剂量关系 | 第93-94页 |
| ·Hp1090不同给药方式的抑制效果 | 第94-95页 |
| ·抗菌肽在CM5传感芯片上的固定 | 第95-97页 |
| ·Hp1090与HCV的相互结合作用 | 第97-98页 |
| ·Hp1 090对脂质膜的作用 | 第98-99页 |
| ·讨论 | 第99-102页 |
| 研究总结 | 第102-103页 |
| 参考文献 | 第103-125页 |
| 博士在读期间发表和待发表论文 | 第125-126页 |
| 致谢 | 第126页 |
