| 摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 引言 | 第9-11页 |
| 1 实验材料和方法 | 第11-25页 |
| 1.1 实验材料 | 第11-19页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第11页 |
| 1.1.2 寡聚体Aβ42的制备 | 第11-12页 |
| 1.1.3 细胞培养相关试剂 | 第12页 |
| 1.1.4 细胞转染相关试剂 | 第12页 |
| 1.1.5 蛋白免疫印迹相关试剂 | 第12-13页 |
| 1.1.6 实验用试剂盒 | 第13页 |
| 1.1.7 常用溶液的配方 | 第13-17页 |
| 1.1.8 实验仪器 | 第17-19页 |
| 1.2 实验方法 | 第19-25页 |
| 1.2.1 SH-SY5Y细胞培养和细胞活性检测 | 第19页 |
| 1.2.2 小鼠神经细胞的原代培养 | 第19-20页 |
| 1.2.3 小鼠海马神经元转染 | 第20页 |
| 1.2.4 图像获取和分析 | 第20页 |
| 1.2.5 海马区埋管注射手术 | 第20-21页 |
| 1.2.6 新物体识别实验 | 第21页 |
| 1.2.7 水迷宫实验 | 第21-22页 |
| 1.2.8 SO Aβ42和TAX处理 | 第22-23页 |
| 1.2.9 蛋白免疫印记实验 | 第23页 |
| 1.2.10 cPLA2和PGE2的含量测定 | 第23-24页 |
| 1.2.11 数据统计 | 第24-25页 |
| 2 实验结果 | 第25-33页 |
| 2.1 TAX以剂量依赖的方式抑制寡聚体Aβ42引起的SH-SY5Y细胞死亡 | 第25页 |
| 2.2 TAX抑制了由寡聚体Aβ42引起的海马神经元树突丝的损伤 | 第25-27页 |
| 2.3 TAX抑制了寡聚体Aβ42引起的海马神经元突触丢失 | 第27-28页 |
| 2.4 TAX改善了寡聚体Aβ42诱导的小鼠的认知功能障碍 | 第28页 |
| 2.5 TAX改善了寡聚体Aβ42引起的小鼠的空间记忆损伤 | 第28-30页 |
| 2.6 TAX 抑制了寡聚体 Aβ42 引起的的小鼠海马中PSD 95的表达水平的降低 | 第30-31页 |
| 2.7 TAX 抑制了寡聚体 Aβ42 诱导的海马神经元和组织中cPLA2和PGE2水平的升高 | 第31-33页 |
| 3 讨论 | 第33-36页 |
| 4 结论 | 第36-37页 |
| 参考文献 | 第37-42页 |
| 附录A 文献综述 | 第42-51页 |
| 参考文献 | 第48-51页 |
| 在学研究成果 | 第51-52页 |
| 致谢 | 第52-53页 |
| 附件 | 第53-55页 |
