| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 引言 | 第13-28页 |
| 0.1 黄曲霉菌 | 第13-16页 |
| 0.1.1 黄曲霉菌的生长环境 | 第13-14页 |
| 0.1.2 黄曲霉毒素的形成机理 | 第14-15页 |
| 0.1.3 黄曲霉毒素危害 | 第15-16页 |
| 0.2 黄曲霉污染及防治 | 第16-23页 |
| 0.2.1 花生黄曲霉威胁 | 第17-19页 |
| 0.2.2 黄曲霉的物理化学防治 | 第19-20页 |
| 0.2.3 黄曲霉的生物防治 | 第20-23页 |
| 0.3 黄曲霉侵染的底物利用 | 第23-25页 |
| 0.3.1 淀粉酶 | 第23-24页 |
| 0.3.2 蛋白酶 | 第24页 |
| 0.3.3 脂肪酶 | 第24-25页 |
| 0.3.4 其他酶 | 第25页 |
| 0.4 花生抵抗黄曲霉侵染的研究 | 第25-28页 |
| 0.4.1 被动抗性 | 第25-26页 |
| 0.4.2 诱导抗性 | 第26-28页 |
| 第1章 黄曲霉感染对抗感和易感花生细胞形态的影响 | 第28-39页 |
| 1.1 实验材料与仪器 | 第28-29页 |
| 1.1.1 实验菌株 | 第28页 |
| 1.1.2 实验花生 | 第28-29页 |
| 1.1.3 主要试剂 | 第29页 |
| 1.1.4 实验仪器 | 第29页 |
| 1.2 实验方法 | 第29-32页 |
| 1.2.1 黄曲霉菌孢子悬液的制备 | 第29-30页 |
| 1.2.2 花生种子消毒 | 第30页 |
| 1.2.3 黄曲霉菌侵染实验 | 第30页 |
| 1.2.4 显微结构变化观察 | 第30-31页 |
| 1.2.5 超微结构变化观察 | 第31-32页 |
| 1.3 结果与分析 | 第32-37页 |
| 1.3.1 花生黄曲霉菌感染表观感染程度的观察 | 第32-34页 |
| 1.3.2 抗感花生GT-C20显微形态变化 | 第34页 |
| 1.3.3 易感花生Tifrunner显微形态变化 | 第34-36页 |
| 1.3.4 易感花生Tifrunner超微形态变化 | 第36-37页 |
| 1.4 讨论 | 第37-38页 |
| 1.5 本章小结 | 第38-39页 |
| 第2章 黄曲霉感染对抗感和易感花生主要营养物质的影响 | 第39-50页 |
| 2.1 实验材料与仪器 | 第39-40页 |
| 2.1.1 实验菌株 | 第39页 |
| 2.1.2 实验花生 | 第39-40页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第40页 |
| 2.2 实验方法 | 第40-44页 |
| 2.2.1 黄曲霉菌孢子悬液的制备 | 第40-41页 |
| 2.2.2 花生种子消毒 | 第41页 |
| 2.2.3 黄曲霉菌侵染实验 | 第41-42页 |
| 2.2.4 花生中糖类含量的测定 | 第42页 |
| 2.2.5 花生中脂肪含量的测定 | 第42页 |
| 2.2.6 花生中蛋白质及氨基酸含量的测定 | 第42-43页 |
| 2.2.7 数据分析 | 第43-44页 |
| 2.3 结果与分析 | 第44-48页 |
| 2.3.1 花生黄曲霉菌感染前后各营养成分含量变化 | 第44-47页 |
| 2.3.2 18种氨基酸含量的变化 | 第47-48页 |
| 2.4 讨论 | 第48-49页 |
| 2.5 本章小结 | 第49-50页 |
| 第3章 黄曲霉菌水解酶类基因表达规律的研究 | 第50-59页 |
| 3.1 实验材料与仪器 | 第50-51页 |
| 3.1.1 实验花生组织 | 第50页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第50-51页 |
| 3.1.3 实验仪器 | 第51页 |
| 3.2 实验方法 | 第51-54页 |
| 3.2.1 荧光实时定量PCR法测定黄曲霉水解酶类基因表达的水平 | 第51-54页 |
| 3.3 结果与分析 | 第54-57页 |
| 3.3.1 黄曲霉水解酶类基因在易感花生基质上的表达变化 | 第54-56页 |
| 3.3.2 黄曲霉水解酶类基因在抗感花生基质上的表达变化 | 第56-57页 |
| 3.4 讨论 | 第57-58页 |
| 3.5 本章小结 | 第58-59页 |
| 结论 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-67页 |
| 附录A 缩略词说明 | 第67-68页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文及参加科研情况 | 第68-69页 |
