| 摘要 | 第3-6页 |
| Abstract | 第6-9页 |
| 1 绪论 | 第18-28页 |
| 1.1 杜仲资源简介 | 第18页 |
| 1.2 杜仲药用部位及其主要活性成分研究进展 | 第18-19页 |
| 1.2.1 仲皮活性成分研究进展 | 第18-19页 |
| 1.2.2 杜仲活性成分研究进展 | 第19页 |
| 1.2.3 杜仲翅果活性成分研究进展 | 第19页 |
| 1.3 京尼平药理作用研究进展 | 第19-20页 |
| 1.3.1 保肝利胆 | 第19页 |
| 1.3.2 抗肿瘤 | 第19-20页 |
| 1.3.3 抗糖尿病 | 第20页 |
| 1.3.4 保护神经元 | 第20页 |
| 1.3.5 抗抑郁 | 第20页 |
| 1.3.6 其他药理活性 | 第20页 |
| 1.4 京尼平苷酸的药理作用研究进展 | 第20-22页 |
| 1.4.1 抗肿瘤防辐射 | 第20-21页 |
| 1.4.2 保肝利胆 | 第21页 |
| 1.4.3 抗动脉粥样硬化 | 第21页 |
| 1.4.4 防衰老 | 第21页 |
| 1.4.5 抗炎作用 | 第21-22页 |
| 1.4.6 保护神经细胞 | 第22页 |
| 1.5 杜仲中京尼平苷的提取分离研究进展 | 第22-24页 |
| 1.5.1 京尼平苷提取方法研究进展 | 第22-23页 |
| 1.5.2 京尼平苷的纯化 | 第23-24页 |
| 1.6 京尼平苷的转化 | 第24页 |
| 1.6.1 碱催化转化制备京尼平苷酸 | 第24页 |
| 1.6.2 酶催化转化制备京尼平 | 第24页 |
| 1.6.3 微生物转化制备京尼平 | 第24页 |
| 1.7 新型催化剂 | 第24-26页 |
| 1.7.1 固定化离子液体的研究进展 | 第24-25页 |
| 1.7.2 固定化酶的研究进展 | 第25-26页 |
| 1.8 本研究意义及内容 | 第26-28页 |
| 1.8.1 意义 | 第26页 |
| 1.8.2 内容 | 第26-28页 |
| 2 HPLC检测分析方法的建立 | 第28-39页 |
| 2.1 实验材料、试剂及仪器 | 第28-29页 |
| 2.2 实验方法 | 第29-30页 |
| 2.2.1 标准品溶液的配制 | 第29页 |
| 2.2.2 HPLC分析条件 | 第29页 |
| 2.2.3 标准曲线的绘制 | 第29页 |
| 2.2.4 样品溶液的制备 | 第29页 |
| 2.2.5 方法学考察 | 第29-30页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第30-37页 |
| 2.3.1 HPLC检测京尼平苷、京尼平苷酸和京尼平色谱条件的确定 | 第30-32页 |
| 2.3.2 HPLC检测京尼平苷和绿原酸色谱条件的确定 | 第32-34页 |
| 2.3.3 HPLC检测京尼平苷和松脂醇二葡萄糖苷色谱条件的确定 | 第34-36页 |
| 2.3.4 方法学验证 | 第36-37页 |
| 2.3.5 杜仲叶和皮中各成分含量测定 | 第37页 |
| 2.4 本章小结 | 第37-39页 |
| 3 循环超声提取杜仲皮京尼平苷工艺研究 | 第39-49页 |
| 3.1 实验材料、试剂及仪器 | 第39-40页 |
| 3.2 实验方法 | 第40页 |
| 3.2.1 杜仲皮预处理 | 第40页 |
| 3.2.2 循环超声提取杜仲皮中的京尼平苷 | 第40页 |
| 3.2.3 响应面法优化京尼平苷提取工艺 | 第40页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第40-48页 |
| 3.3.1 循环超声提取工艺优化 | 第41-45页 |
| 3.3.2 响应面法优化提取过程 | 第45-48页 |
| 3.3.3 验证试验 | 第48页 |
| 3.4 本章小结 | 第48-49页 |
| 4 循环超声提取杜仲叶京尼平苷和绿原酸工艺研究 | 第49-61页 |
| 4.1 实验试剂和仪器 | 第49页 |
| 4.2 实验方法 | 第49-51页 |
| 4.2.1 循环超声同时提取杜仲叶京尼平苷和绿原酸 | 第49-50页 |
| 4.2.2 大孔树脂分离京尼平苷和绿原酸 | 第50-51页 |
| 4.2.3 大孔吸附树脂对京尼平苷和绿原酸的动态吸附—解吸特性研究 | 第51页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第51-60页 |
| 4.3.1 循环超声提取杜仲叶京尼平苷和绿原酸 | 第51-56页 |
| 4.3.2 大孔树脂分离京尼平苷和绿原酸 | 第56-60页 |
| 4.4 本章小结 | 第60-61页 |
| 5 大孔树脂纯化京尼平苷 | 第61-73页 |
| 5.1 实验材料与仪器 | 第61页 |
| 5.2 实验方法 | 第61-64页 |
| 5.2.1 提取液的制备 | 第61-62页 |
| 5.2.2 大孔树脂的预处理及含水率测定 | 第62页 |
| 5.2.3 大孔吸附树脂静态吸附量及解吸率的测定 | 第62-63页 |
| 5.2.4 大孔吸附树脂静态吸附动力学试验 | 第63页 |
| 5.2.5 静态吸附温度对京尼平苷吸附量的影响 | 第63页 |
| 5.2.6 静态解吸条件优化 | 第63页 |
| 5.2.7 大孔吸附树脂对杜仲京尼平苷的动态吸附—解吸特性研究 | 第63-64页 |
| 5.2.8 纯化产物的鉴定 | 第64页 |
| 5.2.9 大孔树脂重复利用 | 第64页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第64-72页 |
| 5.3.1 大孔树脂的筛选 | 第64-65页 |
| 5.3.2 温度对树脂吸附量的影响 | 第65-66页 |
| 5.3.3 静态吸附动力学 | 第66-67页 |
| 5.3.4 大孔树脂对京尼平苷静态解吸条件优化 | 第67-68页 |
| 5.3.5 大孔吸附树脂对杜仲京尼平苷的动态吸附—解吸条件的确定 | 第68-70页 |
| 5.3.6 大孔树脂的重复利用 | 第70-71页 |
| 5.3.7 纯化产物的鉴定 | 第71-72页 |
| 5.4 本章小结 | 第72-73页 |
| 6 磁载硅胶固定化碱性离子液体催化转化京尼平苷制备京尼平苷酸 | 第73-92页 |
| 6.1 材料与试剂 | 第74-75页 |
| 6.2 实验方法 | 第75-78页 |
| 6.2.1 磁载硅胶固定化离子液体的制备 | 第75-76页 |
| 6.2.2 磁载硅胶负载离子液体固定量的测定 | 第76页 |
| 6.2.3 磁载硅胶固定化离子液体催化剂的表征 | 第76-77页 |
| 6.2.4 磁载硅胶负载离子液体催化转化京尼平苷 | 第77页 |
| 6.2.5 催化剂的重复利用 | 第77页 |
| 6.2.6 大孔树脂富集制备京尼平苷酸 | 第77-78页 |
| 6.2.7 纯化产物的鉴定 | 第78页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第78-90页 |
| 6.3.1 离子液体固载量 | 第78页 |
| 6.3.2 磁载硅胶固定化离子液体的表征 | 第78-82页 |
| 6.3.3 磁载硅胶固定化碱性离子液体催化剂制备过程优化 | 第82-85页 |
| 6.3.4 磁载硅胶固定化碱性离子液体催化转化京尼平苷条件优化 | 第85-88页 |
| 6.3.5 催化剂的重复利用 | 第88页 |
| 6.3.6 转化产物的纯化 | 第88-89页 |
| 6.3.7 纯化产物的鉴定 | 第89-90页 |
| 6.4 本章小结 | 第90-92页 |
| 7 磁性颗粒负载纤维素酶催化转化京尼平苷制备京尼平 | 第92-109页 |
| 7.1 实验材料和试剂 | 第92-93页 |
| 7.2 实验方法 | 第93-96页 |
| 7.2.1 磁载硅胶固定化纤维素酶的制备 | 第93-94页 |
| 7.2.2 酶活的测定 | 第94页 |
| 7.2.3 磁载硅胶固定化纤维素酶催化剂的表征 | 第94-95页 |
| 7.2.4 磁载硅胶固定化酶催化转化京尼平苷制备京尼平 | 第95页 |
| 7.2.5 催化剂的重复利用 | 第95页 |
| 7.2.6 大孔树脂富集制备京尼平 | 第95-96页 |
| 7.2.7 纯化产物的鉴定 | 第96页 |
| 7.3 结果与讨论 | 第96-108页 |
| 7.3.1 纤维素酶固载量 | 第96页 |
| 7.3.2 磁载硅胶固定化纤维素酶的表征 | 第96-100页 |
| 7.3.3 不同催化条件对磁载硅胶固定化酶催化剂酶活的影响 | 第100-102页 |
| 7.3.4 磁载硅胶固定化纤维素酶催化转化京尼平苷条件的研究 | 第102-104页 |
| 7.3.5 催化剂的重复利用 | 第104-106页 |
| 7.3.6 转化产物的纯化 | 第106-107页 |
| 7.3.7 纯化产物的鉴定 | 第107-108页 |
| 7.4 本章小结 | 第108-109页 |
| 结论 | 第109-112页 |
| 参考文献 | 第112-120页 |
| 附录 | 第120-121页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第121-122页 |
| 致谢 | 第122-124页 |
| 附件 | 第124-125页 |
