| 摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-11页 |
| 缩略语（Abbreviation） | 第12-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-24页 |
| 1 免疫相关细胞 | 第13-18页 |
| 1.1 肠上皮细胞 | 第13-14页 |
| 1.2 树突状细胞 | 第14-15页 |
| 1.3 淋巴细胞 | 第15-18页 |
| 2 益生菌免疫调节功能概述 | 第18-21页 |
| 2.1 益生菌定义与应用 | 第18页 |
| 2.2 益生菌益生功能 | 第18-21页 |
| 2.2.1 调节肠道菌群 | 第18页 |
| 2.2.2 调节免疫细胞 | 第18-19页 |
| 2.2.3 预防和治疗疾病 | 第19-20页 |
| 2.2.4 促进动物生长 | 第20-21页 |
| 3 益生菌的免疫调节分子 | 第21-22页 |
| 4 屎肠球菌益生概述 | 第22-23页 |
| 4.1 屎肠球菌生物学特征 | 第22页 |
| 4.2 屎肠球菌益生功能 | 第22-23页 |
| 4.3 屎肠球菌的研究及应用 | 第23页 |
| 5 研究目的与意义 | 第23-24页 |
| 第二章 屎肠球菌HDRsEf1“跨层”诱导CD4~+T细胞分化的研究 | 第24-46页 |
| 1 试验材料与方法 | 第24-31页 |
| 1.1 试验材料 | 第24-25页 |
| 1.1.1 菌株和细胞 | 第24页 |
| 1.1.2 试验动物 | 第24页 |
| 1.1.3 主要试剂 | 第24-25页 |
| 1.1.4 主要仪器设备 | 第25页 |
| 1.1.5 试剂配置 | 第25页 |
| 1.2 试验方法 | 第25-31页 |
| 1.2.1 MODE-K细胞复苏和培养 | 第25-26页 |
| 1.2.2 HDRsEf1的培养和处理 | 第26页 |
| 1.2.3 小鼠骨髓来源树突状细胞的分离和诱导培养 | 第26页 |
| 1.2.4 HDRsEf1刺激MODE-K的电阻值TEER测定 | 第26-27页 |
| 1.2.5 HDRsEf1刺激BMDC吞噬能力检测 | 第27页 |
| 1.2.6 HDRsEf1刺激BMDC表型流式分析 | 第27页 |
| 1.2.7 小鼠脾脏初始CD4~+T细胞的分选和纯度鉴定 | 第27-28页 |
| 1.2.8 HDRsEf1刺激BMDC诱导CD4~+T细胞分化 | 第28-29页 |
| 1.2.9 蛋白质芯片检测HDRsEf1刺激BMDC分泌细胞因子 | 第29-31页 |
| 1.2.10 ELISA检测HDRsEf1刺激BMDC分泌TSLP和TGF-β | 第31页 |
| 2 试验数据处理和分析 | 第31页 |
| 3 结果与分析 | 第31-43页 |
| 3.1 小鼠骨髓BMDC的体外培养 | 第31-32页 |
| 3.2 小鼠骨髓BMDC的流式鉴定 | 第32-33页 |
| 3.3 HDRsEf1对MODE-K的电阻值TEER的影响 | 第33页 |
| 3.4 HDRsEf1对BMDC吞噬能力的影响 | 第33-34页 |
| 3.5 HDRsEf1对BMDC表型的影响 | 第34-37页 |
| 3.6 小鼠脾脏CD4~+T细胞的鉴定 | 第37页 |
| 3.7 HDRsEf1刺激BMDC诱导CD4~+T细胞分化 | 第37-40页 |
| 3.8 HDRsEf1对BMDC分泌细胞因子的影响 | 第40-43页 |
| 4 讨论 | 第43-46页 |
| 4.1 HDRsEf1对BMDC成熟和其细胞因子分泌的影响 | 第43-44页 |
| 4.2 HDRsEf1刺激BMDC诱导CD4~+T细胞分化 | 第44-46页 |
| 第三章 屎肠球菌HDRsEf1EPS“跨层”诱导CD4~+T细胞分化的研究 | 第46-71页 |
| 1 试验材料与方法 | 第46-51页 |
| 1.1 试验材料 | 第46-47页 |
| 1.1.1 菌株和细胞 | 第46页 |
| 1.1.2 试验动物 | 第46页 |
| 1.1.3 主要试剂 | 第46-47页 |
| 1.1.4 主要仪器设备 | 第47页 |
| 1.1.5 试剂配置 | 第47页 |
| 1.2 试验方法 | 第47-51页 |
| 1.2.1 EPS的浓度测定 | 第47-48页 |
| 1.2.2 EPS对MODE-K细胞的毒性检测 | 第48页 |
| 1.2.3 EPS刺激MODE-K的电阻值TEER的测定 | 第48页 |
| 1.2.4 EPS刺激的BMDC吞噬能力检测 | 第48页 |
| 1.2.5 EPS对BMDC mRNA影响 | 第48-50页 |
| 1.2.5.1 细胞总RNA提取步骤 | 第48-49页 |
| 1.2.5.2 RNA浓度的检测 | 第49页 |
| 1.2.5.3 cDNA的合成 | 第49页 |
| 1.2.5.4 实时荧光定量PCR反应 | 第49-50页 |
| 1.2.5.5 荧光定量PCR数据处理 | 第50页 |
| 1.2.6 EPS刺激BMDC表型流式分析 | 第50页 |
| 1.2.7 EPS刺激BMDC诱导CD4~+T细胞分化 | 第50-51页 |
| 1.2.8 蛋白质芯片检测EPS刺激BMDC分泌细胞因子 | 第51页 |
| 1.2.9 ELISA检测EPS刺激BMDC分泌TSLP和TGF-β | 第51页 |
| 2 试验数据处理和分析 | 第51页 |
| 3 结果与分析 | 第51-68页 |
| 3.1 EPS的浓度测定 | 第51-52页 |
| 3.2 EPS对MODE-K细胞的毒性影响 | 第52页 |
| 3.3 EPS对MODE-K的电阻值TEER的影响 | 第52-53页 |
| 3.4 EPS对BMDC吞噬能力的影响 | 第53-54页 |
| 3.5 EPS对BMDC mRNA的影响 | 第54-55页 |
| 3.6 EPS对BMDC表型的影响 | 第55-59页 |
| 3.7 EPS刺激BMDC诱导CD4~+T细胞分化 | 第59-62页 |
| 3.8 EPS对BMDC分泌细胞因子的影响 | 第62-68页 |
| 4 讨论 | 第68-71页 |
| 4.1 EPS对BMDC成熟和分泌细胞因子的影响 | 第68-69页 |
| 4.2 EPS刺激BMDC诱导CD4~+T细胞分化 | 第69-71页 |
| 结论 | 第71-72页 |
| 参考文献 | 第72-85页 |
| 在读期间发表文章 | 第85-86页 |
| 致谢 | 第86页 |
