| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 前言 | 第11-12页 |
| 第1章 文献综述 | 第12-19页 |
| 1 罗非鱼耐寒相关研究进展 | 第12-13页 |
| 1.1 罗非鱼耐寒能力研究进展 | 第12页 |
| 1.2 罗非鱼耐寒选育研究进展 | 第12-13页 |
| 2 罗非鱼耐寒相关候选基因的研究进展 | 第13-16页 |
| 2.1 HSP70基因 | 第13-14页 |
| 2.2 STIP1基因 | 第14-15页 |
| 2.3 TCP-1-eta基因 | 第15页 |
| 2.4 HSP90α基因 | 第15-16页 |
| 2.5 GSTM3基因 | 第16页 |
| 3 SNP的研究进展 | 第16-17页 |
| 3.1 SNP概述 | 第16-17页 |
| 3.2 SNP的检测方法 | 第17页 |
| 3.3 鱼类遗传育种中SNP标记的应用 | 第17页 |
| 4 本研究的目的与意义 | 第17-19页 |
| 第2章 罗非鱼耐寒相关基因的PCR-SSCP多态性分析 | 第19-37页 |
| 1 低温胁迫筛选实验 | 第19-20页 |
| 1.1 实验材料及仪器设备 | 第19页 |
| 1.2 实验方法 | 第19页 |
| 1.3 取样 | 第19-20页 |
| 2 PCR-SSCP分析 | 第20-25页 |
| 2.1 实验样本 | 第20页 |
| 2.2 DNA提取试剂及仪器 | 第20页 |
| 2.3 PCR反应、聚丙烯酰胺凝胶电泳、琼脂糖凝胶电泳的试剂及仪器 | 第20-21页 |
| 2.4 基因组DNA的提取及检测 | 第21-22页 |
| 2.4.1 基因组DNA提取 | 第21页 |
| 2.4.2 基因组DNA检测 | 第21-22页 |
| 2.5 PCR-SSCP引物合成及退火温度筛选 | 第22-24页 |
| 2.6 PCR扩增 | 第24页 |
| 2.7 PCR-SSCP电泳 | 第24-25页 |
| 2.7.1 试剂配制 | 第24页 |
| 2.7.2 电泳 | 第24-25页 |
| 2.8 数据统计 | 第25页 |
| 3 PCR-SSCP检测结果与分析 | 第25-34页 |
| 3.1 HSP70基因PCR-SSCP检测结果与分析 | 第25-31页 |
| 3.2 TCP-1-eta基因PCR-SSCP检测结果与分析 | 第31-33页 |
| 3.3 STIP1基因、HSP90α基因、GSTM3基因PCR-SSCP检测结果 | 第33-34页 |
| 4 HSP70基因多态性与耐寒性状相关分析 | 第34-35页 |
| 5 TCP-1-eta基因多态性与耐寒性状相关分析 | 第35页 |
| 6 讨论 | 第35-37页 |
| 6.1 罗非鱼耐寒相关候选基因与耐寒性状的关系 | 第35-36页 |
| 6.2 PCR-SSCP在SNP检测中的应用 | 第36-37页 |
| 第3章 罗非鱼耐寒相关基因HSP70和TCP-1-eta的SNP位点筛选 | 第37-51页 |
| 1 测序 | 第37页 |
| 2 数据统计 | 第37页 |
| 3 序列比对 | 第37-44页 |
| 3.1 HSP70基因测序结果比对分析 | 第37-43页 |
| 3.2 TCP-1-eta基因测序结果比对分析 | 第43-44页 |
| 4 单核苷酸多态性与耐寒性状关联分析 | 第44-49页 |
| 4.1 低温8℃组的SNP位点与耐寒性状关联分析 | 第44-46页 |
| 4.2 低温10℃组的SNP位点与耐寒性状关联分析 | 第46页 |
| 4.3 低温12℃组的SNP位点与耐寒性状关联分析 | 第46-48页 |
| 4.4 低温14℃组的SNP位点与耐寒性状关联分析 | 第48-49页 |
| 5 讨论 | 第49-51页 |
| 全文结论 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-59页 |
| 攻读硕士学位期间发表论文情况 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
