| 学位论文的主要创新点 | 第3-4页 |
| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第一章 绪论 | 第11-35页 |
| 1.1 生物分离 | 第11-12页 |
| 1.2 生物分离的方法 | 第12-14页 |
| 1.2.1 沉淀法 | 第12页 |
| 1.2.2 萃取法 | 第12页 |
| 1.2.3 膜分离法 | 第12-13页 |
| 1.2.4 结晶法 | 第13页 |
| 1.2.5 电泳法 | 第13页 |
| 1.2.6 层析法 | 第13-14页 |
| 1.2.6.1 亲和模式层析(AFC) | 第13-14页 |
| 1.2.6.2 体积排阻模式层析(SEC) | 第14页 |
| 1.2.6.3 离子交换模式层析(IEC) | 第14页 |
| 1.2.6.4 疏水模式层析(HIC) | 第14页 |
| 1.3 混合模式层析(MMC) | 第14-18页 |
| 1.3.1 离子交换/反相模式层析(IEC/1RPLC) | 第15-16页 |
| 1.3.2 亲水/反相模式层析(HILIC/RPLC) | 第16页 |
| 1.3.3 亲水/离子交换模式层析(HILIC/IEC) | 第16-17页 |
| 1.3.4 体积排阻/离子交换模式层析(SEC/IEC) | 第17页 |
| 1.3.5 离子交换/疏水模式层析(IEC/HIC) | 第17-18页 |
| 1.4 单克隆抗体的纯化 | 第18-23页 |
| 1.4.1 单克隆抗体及其结构和功能 | 第18-19页 |
| 1.4.2 单克隆抗体药物的发展 | 第19-22页 |
| 1.4.3 单克隆抗体的生产和纯化流程 | 第22-23页 |
| 1.5 疏水电荷诱导层析(HCIC) | 第23-28页 |
| 1.5.1 HCIC概念 | 第24页 |
| 1.5.2 HCIC原理 | 第24-25页 |
| 1.5.3 HCIC吸附性能影响因素 | 第25-27页 |
| 1.5.3.1 配基密度 | 第25-26页 |
| 1.5.3.2 空间臂 | 第26页 |
| 1.5.3.3 硫原子 | 第26-27页 |
| 1.5.4 HCIC在抗体纯化中的应用 | 第27-28页 |
| 1.6 膜层析在生物纯化中的应用 | 第28-32页 |
| 1.6.1 膜和膜技术的定义及应用 | 第28页 |
| 1.6.2 膜层析的原理 | 第28-29页 |
| 1.6.3 膜层析的介质 | 第29-30页 |
| 1.6.4 膜层析的分类及应用 | 第30-32页 |
| 1.6.4.1 单一模式膜层析 | 第30-31页 |
| 1.6.4.2 多模式膜层析(MMM) | 第31-32页 |
| 1.7 本文研究意义和内容 | 第32-35页 |
| 1.7.1 本文研究背景及目的 | 第32-33页 |
| 1.7.2 本文研究内容 | 第33-35页 |
| 第二章 疏水电荷诱导亲和膜活化条件的探索 | 第35-53页 |
| 2.1 引言 | 第35-36页 |
| 2.2 实验部分 | 第36-41页 |
| 2.2.1 材料与设备 | 第36-37页 |
| 2.2.1.1 材料与化学试剂 | 第36-37页 |
| 2.2.1.2 仪器与设备 | 第37页 |
| 2.2.2 实验方法 | 第37-41页 |
| 2.2.2.1 RC-g-DEGDE和RC-g-TMPEG膜的制备过程 | 第37页 |
| 2.2.2.2 HCIC膜吸附剂的制备过程 | 第37-38页 |
| 2.2.2.3 膜的测试与表征 | 第38-41页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第41-50页 |
| 2.3.1 RC-g-DEGDE和RC-g-TMPEG膜的制备 | 第41-44页 |
| 2.3.1.1 膜表面化学结构表征 | 第41页 |
| 2.3.1.2 接枝时间的影响 | 第41-44页 |
| 2.3.2 HCIC膜吸附剂的表征 | 第44-50页 |
| 2.3.2.1 HCIC膜吸附剂表面化学结构 | 第44-47页 |
| 2.3.2.2 SEM结果 | 第47-48页 |
| 2.3.2.3 Zeta电位结果 | 第48-49页 |
| 2.3.2.4 WCA结果 | 第49-50页 |
| 2.3.2.5 配基密度结果 | 第50页 |
| 2.4 本章结论 | 第50-53页 |
| 第三章 疏水电荷诱导亲和膜抗体纯化性能的研究 | 第53-73页 |
| 3.1 引言 | 第53页 |
| 3.2 实验部分 | 第53-61页 |
| 3.2.1 材料与设备 | 第53-55页 |
| 3.2.1.1 材料与化学试剂 | 第53-54页 |
| 3.2.1.2 仪器与设备 | 第54-55页 |
| 3.2.2 实验方法 | 第55-61页 |
| 3.2.2.1 溶液中蛋白质含量的测试 | 第55页 |
| 3.2.2.2 蛋白质浓度标准曲线的绘制 | 第55-56页 |
| 3.2.2.3 蛋白质吸附热力学的研究 | 第56页 |
| 3.2.2.4 蛋白质吸附动力学的研究 | 第56-57页 |
| 3.2.2.5 pH值对蛋白质静态吸附性能的影响 | 第57页 |
| 3.2.2.6 盐浓度和盐种类对蛋白质吸附性能的影响 | 第57-58页 |
| 3.2.2.7 蛋白质动态吸附性能的研究 | 第58页 |
| 3.2.2.8 穿透曲线的测试 | 第58-59页 |
| 3.2.2.9 流速对蛋白质动态吸附性能的影响 | 第59页 |
| 3.2.2.10 凝胶电泳测试 | 第59-61页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第61-72页 |
| 3.3.1 膜吸附剂的吸附性能 | 第61-69页 |
| 3.3.1.1 蛋白质的静态吸附 | 第61-63页 |
| 3.3.1.2 吸附热力学 | 第63-64页 |
| 3.3.1.3 吸附动力学 | 第64-66页 |
| 3.3.1.4 蛋白质动态吸附 | 第66-67页 |
| 3.3.1.5 穿透曲线 | 第67-68页 |
| 3.3.1.6 凝胶电泳 | 第68-69页 |
| 3.3.2 盐浓度和盐种类对吸附行为的影响 | 第69-71页 |
| 3.3.3 流速对动态吸附行为的影响 | 第71-72页 |
| 3.4 本章结论 | 第72-73页 |
| 第四章 SiO_2纳米粒子的引入对膜吸附剂性能的影响 | 第73-89页 |
| 4.1 引言 | 第73-74页 |
| 4.2 实验部分 | 第74-77页 |
| 4.2.1 材料与设备 | 第74-75页 |
| 4.2.1.1 材料与化学试剂 | 第74-75页 |
| 4.2.1.2 仪器与设备 | 第75页 |
| 4.2.2 实验方法与过程 | 第75-77页 |
| 4.2.2.1 SiO_2-SH和SiO_2-W-SH的制备 | 第75-76页 |
| 4.2.2.2 RC-g-DEGDE膜的制备 | 第76页 |
| 4.2.2.3 RC-SiW-4VP和RC-SiS-4VP膜的制备 | 第76-77页 |
| 4.2.2.5 膜的测试与表征 | 第77页 |
| 4.2.2.6 溶液中蛋白质含量的测试 | 第77页 |
| 4.2.2.7 pH值对蛋白质静态吸附性能的影响 | 第77页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第77-88页 |
| 4.3.1 SiO_2-SH和SiO_2-W-SH表面化学结构与性能分析 | 第77-81页 |
| 4.3.1.1 ATR-FTIR结果 | 第77-78页 |
| 4.3.1.2 XPS结果 | 第78-79页 |
| 4.3.1.3 TG结果 | 第79-80页 |
| 4.3.1.4 TEM结果 | 第80-81页 |
| 4.3.1.5 BET结果 | 第81页 |
| 4.3.2 RC-SiW-4VP膜和RC-SiS-4VP膜表面结构与性能的分析 | 第81-86页 |
| 4.3.2.1 ATR-FTIR结果 | 第81-82页 |
| 4.3.2.2 XPS结果 | 第82-83页 |
| 4.3.2.3 SEM结果 | 第83-85页 |
| 4.3.2.4 BET结果 | 第85页 |
| 4.3.2.5 WCA结果 | 第85-86页 |
| 4.3.2.6 Zeta电位结果 | 第86页 |
| 4.3.3 蛋白质静态吸附 | 第86-88页 |
| 4.4 本章结论 | 第88-89页 |
| 第五章 结论与展望 | 第89-91页 |
| 参考文献 | 第91-105页 |
| 攻读博士期间发表论文及参加科研情况 | 第105-107页 |
| 主要符号注释表 | 第107-109页 |
| 致谢 | 第109页 |
