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发酵重组大肠杆菌产(+)γ-内酰胺酶及酶的固定化研究

摘要第4-6页
ABSTRACT第6-8页
第1章 绪论第18-26页
    1.1 微生物发酵研究进展第18-21页
        1.1.1 酶和酶催化的简介第18页
        1.1.2 发酵简介及研究进展第18-21页
    1.2 (+)γ-内酰胺酶的介绍第21页
    1.3 固定化酶的研究进展第21-25页
        1.3.1 固定化简介第21-22页
        1.3.2 酶固定化方法研究进展第22-23页
        1.3.3 酶固定化载体研究进展第23-25页
    1.4 课题研究的目的、意义和内容第25-26页
        1.4.1 课题研究的目的和意义第25页
        1.4.2 课题研究的内容第25-26页
第2章 重组大肠杆菌发酵产(+)γ-内酰胺酶的条件优化第26-41页
    2.1 引言第26页
    2.2 本章主要研究内容第26页
    2.3 实验仪器及材料(见附录)第26页
    2.4 实验方法第26-28页
        2.4.1 种子培养基和发酵培养基配方第26-27页
        2.4.2 实验相关参数检测第27-28页
        2.4.3 摇瓶接种方法和罐上接种方法第28页
        2.4.4 发酵罐上调控方法第28页
        2.4.5 菌种复壮方法第28页
        2.4.6 绘图方法第28页
    2.5 实验结果及讨论第28-39页
        2.5.1 摇瓶发酵鉴定菌种及复壮实验结果第28-29页
        2.5.2 摇瓶工艺发酵罐上放大培养第29-31页
        2.5.3 恒定溶氧发酵第31页
        2.5.4 恒温37℃发酵第31-32页
        2.5.5 恒温30℃培发酵第32-33页
        2.5.6 37℃培养42℃诱导第33页
        2.5.7 增加卡那霉素浓度第33-35页
        2.5.8 乳糖量加倍第35-36页
        2.5.9 对数期开始时降温至30℃第36-37页
        2.5.10 对数期开始时升温至42℃第37-39页
        2.5.11 对数期开始时升温后双诱导第39页
    2.6 本章小结第39-41页
第3章 HA树脂固定化(+)γ-内酰胺酶研究第41-57页
    3.1 引言第41页
    3.2 本章主要研究内容第41页
    3.3 实验仪器与药品(见附录)第41页
    3.4 实验方法第41-44页
        3.4.1 HA树脂清洗第41页
        3.4.2 酶液制备第41-42页
        3.4.3 戊二醛交联方法第42页
        3.4.4 固定化酶制备方法第42页
        3.4.5 固定化酶酶活测定方法第42页
        3.4.6 交联、固定化条件优化研究方法第42-43页
        3.4.7 固定化酶催化反应条件的优化第43页
        3.4.8 酶学性质研究方法第43-44页
        3.4.9 固定化酶的表征方法第44页
    3.5 实验结果及讨论第44-56页
        3.5.1 戊二醛交联条件优化结果第44-46页
            3.5.1.1 戊二醛交联浓度实验结果第44-45页
            3.5.1.2 戊二醛交联时间实验结果第45页
            3.5.1.3 戊二醛交联温度实验结果第45-46页
        3.5.2 固定化优化条件结果第46-47页
            3.5.2.1 固定化温度实验结果第46-47页
            3.5.2.2 固定化时间实验结果第47页
        3.5.3 反应条件优化第47-49页
            3.5.3.1 金属离子对反应的影响第47-48页
            3.5.3.2 温度对底物的影响第48页
            3.5.3.3 固定化酶与底物用量比的确定第48-49页
        3.5.4 酶学性质研究结果第49-53页
            3.5.4.1 最适pH实验结果第49-50页
            3.5.4.2 最适温度实验结果第50页
            3.5.4.3 Km与Vmax的测定结果第50-52页
            3.5.4.4 表观活化能的测定结果第52-53页
        3.5.5 固定化酶的表征结果第53-56页
            3.5.5.1 固定化酶的耐热性实验结果第53-54页
            3.5.5.2 固定化酶的pH耐受性实验第54-55页
            3.5.5.3 固定化酶的储藏性实验结果第55页
            3.5.5.4 固定化酶重复使用实验结果第55-56页
    3.6 本章小结第56-57页
第4章 离子交换树脂固定(+)γ-内酰胺酶研究第57-67页
    4.1 引言第57页
    4.2 本章主要研究内容第57页
    4.3 实验仪器与药品(见附录)第57页
    4.4 实验方法第57-59页
        4.4.1 离子交换树脂的清洗方法第57-58页
        4.4.2 酶液的制备方法第58页
        4.4.3 固定化酶的制备原理和方法第58-59页
        4.4.4 固定化酶酶活的测定方法第59页
        4.4.5 载体筛选和固定化条件优化方法第59页
        4.4.6 酶学性质研究方法第59页
        4.4.7 固定化酶表征方法第59页
    4.5 实验结果及讨论第59-66页
        4.5.1 树脂筛选结果第59-60页
        4.5.2 固定化温度实验结果第60页
        4.5.3 固定化时间实验结果第60-61页
        4.5.4 酶学性质实验结果第61-64页
            4.5.4.1 最适pH实验结果第61-62页
            4.5.4.2 最适温度实验结果第62-63页
            4.5.4.3 Km与Vmax实验结果第63页
            4.5.4.4 表观活化能实验结果第63-64页
        4.5.5 固定化酶的表征结果第64-66页
            4.5.5.1 固定化酶耐热性实验结果第64-65页
            4.5.5.2 固定化酶储藏性实验结果第65页
            4.5.5.3 固定化酶重复使用实验结果第65-66页
    4.6 本章小结第66-67页
第5章 功能化氧化石墨烯固定化(+)γ-内酰胺酶研究第67-74页
    5.1 引言第67页
    5.2 本章主要研究内容第67页
    5.3 实验仪器与药品(见附录)第67页
    5.4 实验方法第67-69页
        5.4.1 氧化石墨烯的制备第67-68页
        5.4.2 氧化石墨烯羧基修饰方法第68页
        5.4.3 固定化酶制备第68-69页
        5.4.4 酶学性质研究第69页
        5.4.5 固定化酶表征第69页
    5.5 实验结果及讨论第69-73页
        5.5.1 固定化酶红外表征结果第69-70页
        5.5.2 固定化酶耐热性实验结果第70页
        5.5.3 固定化酶重复实验结果第70-71页
        5.5.4 固定化酶酶学性质实验结果第71-73页
            5.5.4.1 最适pH实验第71-72页
            5.5.4.2 最适温度实验第72页
            5.5.4.3 Km和Vmax实验结果第72-73页
            5.5.4.4 表观活化能实验结果第73页
    5.6 本章小结第73-74页
第6章 总结与展望第74-75页
参考文献第75-78页
附录第78-80页
作者及导师简介第80-81页
致谢第81-82页
附件第82-83页

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