| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 引言 | 第12-14页 |
| 第1章 诺如病毒广州株GZ20133135全基因组序列测定及分析 | 第14-26页 |
| 1.1 材料与方法 | 第14-20页 |
| 1.1.1 标本 | 第14页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第14页 |
| 1.1.3 主要溶液配制 | 第14-15页 |
| 1.1.4 主要仪器 | 第15-16页 |
| 1.1.5 标本处理 | 第16页 |
| 1.1.6 病毒核酸的提取 | 第16页 |
| 1.1.7 病毒RNA逆转录 | 第16-17页 |
| 1.1.8 病毒基因组扩增 | 第17-18页 |
| 1.1.9 结果鉴定 | 第18-20页 |
| 1.2 结果 | 第20-23页 |
| 1.2.1 诺如病毒基因组结构特征 | 第20页 |
| 1.2.2 诺如病毒基因组全序列比较 | 第20-21页 |
| 1.2.3 1991年至今诺如病毒GII-4 型变异株ORF2区氨基酸位点变化情况分析101.3 讨论 | 第21-23页 |
| 1.4 结论 | 第23页 |
| 参考文献 | 第23-26页 |
| 第2章 GII-4 型诺如病毒P粒子制备及HBGAs相关性研究 | 第26-46页 |
| 2.1 材料和方法 | 第26-37页 |
| 2.1.1 材料 | 第26-28页 |
| 2.1.2 扩增广州新爆发Sydney代表株 3135 P区基因序列 | 第28-29页 |
| 2.1.3 pGEM-T Easy-P的TA克隆 | 第29-31页 |
| 2.1.4 构建表达质粒pGEX4T1-P | 第31-32页 |
| 2.1.5 表达目的蛋白 | 第32-33页 |
| 2.1.6 GST融合蛋白的纯化 | 第33-34页 |
| 2.1.7 唾液表型测定 | 第34-35页 |
| 2.1.8 EIA检测P蛋白与HBGAs受体的结合 | 第35-36页 |
| 2.1.9 寡糖结合分析实验 | 第36-37页 |
| 2.2 结果 | 第37-42页 |
| 2.2.1 扩增GII-4 型NVs P区基因序列 | 第37页 |
| 2.2.2 构建PGEM-Teasy-P重组质粒 | 第37-38页 |
| 2.2.3 构建PGEM-4T1-P表达质粒 | 第38页 |
| 2.2.4 P蛋白的小量表达 | 第38-39页 |
| 2.2.5 P蛋白的大量表达及纯化 | 第39页 |
| 2.2.6 唾液表型测定 | 第39-40页 |
| 2.2.7 EIA检测P蛋白与HBGAs受体的结合 | 第40-42页 |
| 2.2.8 寡糖结合实验 | 第42页 |
| 2.3 讨论 | 第42-45页 |
| 2.4 结论 | 第45页 |
| 参考文献 | 第45-46页 |
| 第3章 综述 | 第46-59页 |
| 3.1 诺如病毒基因组特征 | 第46页 |
| 3.2 诺如病毒蛋白质 | 第46-47页 |
| 3.2.1 非结构蛋白 | 第46-47页 |
| 3.2.2 结构蛋白 | 第47页 |
| 3.3 诺如病毒与宿主的相互作用 | 第47-49页 |
| 3.4 诺如病毒流行病学特征 | 第49-50页 |
| 3.5 诺如病毒感染的临床表现 | 第50页 |
| 3.6 诺如病毒检测方法 | 第50-52页 |
| 3.6.1 电镜法 | 第50-51页 |
| 3.6.2 免疫学方法 | 第51页 |
| 3.6.3 分子生物学方法 | 第51-52页 |
| 3.7 治疗、预防及疫苗的研究 | 第52-53页 |
| 3.8 小结 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-59页 |
| 结论 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 导师简介 | 第61-62页 |
| 作者简介 | 第62-63页 |
| 学位论文数据集 | 第63页 |
