| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 引言 | 第8-9页 |
| 第1章 文献综述 | 第9-18页 |
| 1.1 三角帆蚌概述 | 第9-12页 |
| 1.1.1 三角帆蚌分类及外形特征 | 第9-11页 |
| 1.1.2 三角帆蚌习性及分布 | 第11页 |
| 1.1.3 三角帆蚌主要流行疾病 | 第11-12页 |
| 1.1.3.1 细菌性感染 | 第11-12页 |
| 1.1.3.2 病毒性感染 | 第12页 |
| 1.2 贝类先天免疫系统“非己”识别 | 第12-13页 |
| 1.2.1 病原相关分子模式 | 第12-13页 |
| 1.2.2 模式识别受体 | 第13页 |
| 1.3 肽聚糖识别蛋白 | 第13-17页 |
| 1.3.1 发现和进展 | 第14页 |
| 1.3.2 结构和分类 | 第14-16页 |
| 1.3.3 功能 | 第16页 |
| 1.3.4 软体动物PGRPs研究进展 | 第16-17页 |
| 1.4 本研究的意义及目的 | 第17-18页 |
| 第2章 三角帆蚌PGRP-S基因cDNA克隆及表达分析 | 第18-35页 |
| 2.1 前言 | 第18-20页 |
| 2.2 主要材料 | 第20-22页 |
| 2.2.1 主要试剂 | 第20-21页 |
| 2.2.2 主要仪器与设备 | 第21页 |
| 2.2.3 实验材料 | 第21-22页 |
| 2.3 方法 | 第22-28页 |
| 2.3.1 总RNA提取 | 第22页 |
| 2.3.2 hcPGRP-S基因cDNA全长获得 | 第22-26页 |
| 2.3.2.1 hcPGRP-S cDNA 5′端片段克隆 | 第22-24页 |
| 2.3.2.2 hcPGRP-S cDNA 3′端片段克隆 | 第24-26页 |
| 2.3.3 hcPGRP-S基因序列分析与系统进化树构建 | 第26-27页 |
| 2.3.4 hcPGRP-S在不同组织中的表达 | 第27页 |
| 2.3.5 注射PGN或LPS后hcPGRP-S在肝胰腺中的表达变化 | 第27-28页 |
| 2.4 结果 | 第28-32页 |
| 2.4.1 hcPGRP-S基因cDNA序列全长及分析 | 第28-29页 |
| 2.4.2 hcPGRP-S氨基酸序列同源性分析 | 第29-30页 |
| 2.4.3 hcPGRP-S系统进化关系 | 第30页 |
| 2.4.4 hcPGRP-S组织表达分布 | 第30-31页 |
| 2.4.5 PGN或LPS刺激后肝胰腺中hcPGRP-S表达分析 | 第31-32页 |
| 2.5 结论与讨论 | 第32-35页 |
| 第3章 三角帆蚌PGRP-L基因cDNA克隆及表达分析 | 第35-46页 |
| 3.1 前言 | 第35页 |
| 3.2 主要材料 | 第35-36页 |
| 3.2.1 主要试剂 | 第35页 |
| 3.2.2 主要仪器与设备 | 第35页 |
| 3.2.3 实验材料 | 第35-36页 |
| 3.3 方法 | 第36-39页 |
| 3.3.1 RNA提取 | 第36页 |
| 3.3.2 hcPGRP-L基因cDNA全长获得 | 第36-37页 |
| 3.3.2.1 hcPGRP-L cDNA 5′端片段克隆 | 第36页 |
| 3.3.2.2 hcPGRP-L cDNA 3′端片段克隆 | 第36-37页 |
| 3.3.3 hcPGRP-L基因序列分析与系统进化树构建 | 第37-39页 |
| 3.3.4 hcPGRP-L在不同组织中的表达 | 第39页 |
| 3.3.5 注射PGN或LPS后hcPGRP-L在肝胰腺中的表达变化 | 第39页 |
| 3.4 结果 | 第39-43页 |
| 3.4.1 hcPGRP-L基因cDNA序列全长及分析 | 第39-41页 |
| 3.4.2 hcPGRP-L氨基酸序列同源性分析 | 第41页 |
| 3.4.3 hcPGRP-L系统进化关系 | 第41-42页 |
| 3.4.4 hcPGRP-L组织表达分布 | 第42页 |
| 3.4.5 PGN或LPS刺激后肝胰腺中hcPGRP-L表达分析 | 第42-43页 |
| 3.5 结论与讨论 | 第43-46页 |
| 结论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-54页 |
| 附录 | 第54-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
| 在读期间公开发表论文（著）及科研情况等 | 第56页 |
