摘要 | 第4-6页 |
abstract | 第6-8页 |
第一章 绪论 | 第13-39页 |
1.1 纳米材料与环境 | 第13-21页 |
1.1.1 纳米材料分类和性质 | 第13-16页 |
1.1.2 纳米材料与环境 | 第16-18页 |
1.1.3 纳米材料的几种典型生物毒性效应 | 第18-21页 |
1.2 TiO_2 NPs的毒性研究进展 | 第21-27页 |
1.2.1 TiO_2 NPs的应用 | 第21-22页 |
1.2.2 TiO_2 NPs的环境释放 | 第22页 |
1.2.3 淡水环境中TiO_2 NPs的生物毒性 | 第22-24页 |
1.2.4 影响金属氧化物纳米颗粒细菌毒性的典型因素 | 第24-27页 |
1.3 MNPs的环境应用及毒性研究进展 | 第27-31页 |
1.3.1 MNPs的合成概述 | 第27-28页 |
1.3.2 MNPs在水污染治理中的应用 | 第28-30页 |
1.3.3 MNPs的毒性效应 | 第30-31页 |
1.4 As和Pb的毒性研究进展 | 第31-35页 |
1.4.1 水环境中As、Pb的来源和特征 | 第31-32页 |
1.4.2 As、Pb的危害和毒性 | 第32-35页 |
1.5 复合污染物的环境风险 | 第35-36页 |
1.6 论文研究目的、内容和意义 | 第36-37页 |
1.7 论文结构 | 第37-39页 |
第二章 TiO_2 NPs对铜绿假单胞菌的毒性效应 | 第39-57页 |
2.1 材料和方法 | 第39-45页 |
2.1.1 材料和仪器 | 第39-41页 |
2.1.2 纳米颗粒的性质 | 第41页 |
2.1.3 纳米颗粒悬液的配置 | 第41-42页 |
2.1.4 悬浮培养毒性实验 | 第42-43页 |
2.1.5 贴壁培养毒性实验 | 第43-44页 |
2.1.6 生物膜的观察 | 第44页 |
2.1.7 TiO_2 NPs与细菌的相互作用 | 第44页 |
2.1.8 数据分析 | 第44-45页 |
2.2 结果和讨论 | 第45-54页 |
2.2.1 不同粒径和质量浓度的TiO_2 NPs对细菌毒性 | 第45-50页 |
2.2.2 不同粒径和表面积浓度的TiO_2 NPs对细菌毒性 | 第50-52页 |
2.2.3 TiO_2 NPs导致细菌毒性机理的探讨 | 第52-54页 |
2.3 小结 | 第54-57页 |
第三章 MNPs的合成和对As、Pb的吸附 | 第57-67页 |
3.1 材料和方法 | 第57-61页 |
3.1.1 材料和仪器 | 第57-58页 |
3.1.2 MNPs的制备 | 第58-59页 |
3.1.3 MNPs吸附As、Pb实验 | 第59-60页 |
3.1.4 MNPs吸附As、Pb复合物的制备 | 第60页 |
3.1.5 MNPs与As、Pb复合物的表征 | 第60-61页 |
3.2 结果和讨论 | 第61-65页 |
3.2.1 SEM分析 | 第61-62页 |
3.2.2 XRD分析 | 第62-63页 |
3.2.3 吸附等温线 | 第63-65页 |
3.3 小结 | 第65-67页 |
第四章 MNPs-As对人胚肾细胞的毒性效应 | 第67-95页 |
4.1 材料和方法 | 第68-78页 |
4.1.1 材料和仪器 | 第68-70页 |
4.1.2 溶液的配制 | 第70页 |
4.1.3 培养基中纳米颗粒的表征 | 第70页 |
4.1.4 培养基的pH值测定 | 第70-71页 |
4.1.5 细胞的复苏和培养 | 第71-72页 |
4.1.6 细胞活性检测 | 第72页 |
4.1.7 细胞形态的光学显微镜观察 | 第72-73页 |
4.1.8 细胞摄取纳米颗粒的观察 | 第73页 |
4.1.9 细胞摄取纳米颗粒含量的测定 | 第73-74页 |
4.1.10 细胞氧化应激的检测 | 第74-77页 |
4.1.11 细胞凋亡的检测 | 第77-78页 |
4.1.12 数据处理 | 第78页 |
4.2 结果和讨论 | 第78-93页 |
4.2.1 培养基的pH值 | 第78-79页 |
4.2.2 培养基中纳米颗粒的表征 | 第79-80页 |
4.2.3 细胞活性影响分析 | 第80-81页 |
4.2.4 细胞形态变化分析 | 第81-83页 |
4.2.5 细胞对纳米颗粒的摄取分析 | 第83-86页 |
4.2.6 细胞氧化应激水平分析 | 第86-87页 |
4.2.7 细胞凋亡影响分析 | 第87-91页 |
4.2.8 对相关毒性效应的讨论 | 第91-93页 |
4.3 小结 | 第93-95页 |
第五章 MNPs-Pb对大鼠肾细胞的毒性效应 | 第95-111页 |
5.1 | 第95-100页 |
5.1.1 材料和仪器 | 第95-97页 |
5.1.2 溶液的配置和pH值测定 | 第97-98页 |
5.1.3 细胞的复苏和培养 | 第98页 |
5.1.4 培养基中纳米颗粒的表征 | 第98页 |
5.1.5 细胞活性检测 | 第98-99页 |
5.1.6 细胞形态的光学显微镜观察 | 第99页 |
5.1.7 细胞摄取纳米颗粒的TEM观察 | 第99页 |
5.1.8 细胞凋亡的检测 | 第99-100页 |
5.1.9 数据处理 | 第100页 |
5.2 结果和讨论 | 第100-108页 |
5.2.1 培养基的pH值 | 第100-101页 |
5.2.2 培养基中纳米颗粒的表征 | 第101页 |
5.2.3 细胞活性影响分析 | 第101-103页 |
5.2.4 细胞形态变化分析 | 第103-104页 |
5.2.5 细胞对纳米颗粒的摄取分析 | 第104-106页 |
5.2.6 细胞凋亡影响分析 | 第106-108页 |
5.3 小结 | 第108-111页 |
第六章 主要结论、创新点和建议 | 第111-115页 |
6.1 主要结论 | 第111-112页 |
6.1.1 TiO_2 NPs对铜绿假单胞菌的毒性效应 | 第111页 |
6.1.2 MNPs的合成和对As、Pb的吸附 | 第111-112页 |
6.1.3 MNPs-As对人胚肾细胞的毒性效应 | 第112页 |
6.1.4 MNPs-Pb对大鼠肾细胞的毒性效应 | 第112页 |
6.2 创新点 | 第112-113页 |
6.3 建议 | 第113-115页 |
参考文献 | 第115-129页 |
作者简介及博士期间取得的科研成果 | 第129-131页 |
致谢 | 第131页 |