| 摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-7页 |
| 中英文缩略词表 | 第10-12页 |
| 第1章 引言 | 第12-16页 |
| 1.1 研究背景 | 第12页 |
| 1.2 VSMCs的钙调节 | 第12-13页 |
| 1.3 STIM1/Orai1表达异常参与血管功能受损 | 第13-14页 |
| 1.4 Calcineurin-NFAT信号途径 | 第14-16页 |
| 1.4.1 压力负荷通过激活calcineurin-NFAT信号促进心肌细胞肥厚 | 第14页 |
| 1.4.2 Calcineurin-NFAT信号通路参与VSMCs增殖和分化 | 第14页 |
| 1.4.3 Calcineurin-NFAT信号途径与STIM1/Orai | 第14-16页 |
| 第2章 材料和方法 | 第16-29页 |
| 2.1 实验动物 | 第16页 |
| 2.2 实验细胞 | 第16页 |
| 2.3 主要试剂 | 第16-17页 |
| 2.4 主要仪器 | 第17-18页 |
| 2.5 实验方法 | 第18-28页 |
| 2.5.1 冠状动脉VSMCs的培养 | 第18-19页 |
| 2.5.2 压力培养方法 | 第19-20页 |
| 2.5.3 大鼠冠状动脉VSMCs的鉴定 | 第20-21页 |
| 2.5.4 冠状动脉VSMCs总蛋白的提取 | 第21页 |
| 2.5.5 BCA法蛋白定量 | 第21-23页 |
| 2.5.6 蛋白质免疫印迹(Westernblot) | 第23-25页 |
| 2.5.7 大鼠冠状动脉组织病理学检查 | 第25-26页 |
| 2.5.8 大鼠冠状动脉免疫组化检查 | 第26-27页 |
| 2.5.9 大鼠冠状动脉VSMCs增殖的检测 | 第27页 |
| 2.5.10 大鼠冠状动脉VSMCs衰老的检测 | 第27-28页 |
| 2.6 统计学方法 | 第28-29页 |
| 第3章 结果 | 第29-41页 |
| 3.1 冠状动脉HE染色结果 | 第29页 |
| 3.2 冠状动脉免疫组织化学结果 | 第29-30页 |
| 3.3 培养冠状动脉VSMCs的观察及鉴定 | 第30-32页 |
| 3.4 冠状动脉VSMCs相关蛋白的表达 | 第32-35页 |
| 3.4.1 冠状动脉VSMCs表型相关蛋白的表达 | 第32-33页 |
| 3.4.2 冠状动脉VSMCs收缩相关蛋白的表达 | 第33-35页 |
| 3.5 高静水压处理后冠状动脉VSMCs相关蛋白的表达 | 第35-38页 |
| 3.5.1 冠状动脉VSMCs在高静水压处理后表型相关蛋白的表达 | 第35-36页 |
| 3.5.2 冠状动脉VSMCs在高静水压处理后收缩相关蛋白的表达 | 第36-38页 |
| 3.6 冠状动脉VSMCs增殖能力的检测 | 第38-40页 |
| 3.6.1 冠状动脉VSMCs增殖能力的变化 | 第38-39页 |
| 3.6.2 高静水压干预后冠状动脉VSMCs增殖能力的变化 | 第39-40页 |
| 3.7 冠状动脉VSMCs衰老能力的检测 | 第40-41页 |
| 第4章 讨论 | 第41-45页 |
| 第5章 结论与展望 | 第45-46页 |
| 5.1 结论 | 第45页 |
| 5.2 展望 | 第45-46页 |
| 致谢 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-50页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第50-51页 |
| 综述 | 第51-58页 |
| 参考文献 | 第55-58页 |
