中英文对照 | 第5-6页 |
摘要 | 第6-7页 |
ABSTRACT | 第7页 |
前言 | 第8-9页 |
一、材料与方法 | 第9-19页 |
(一)材料 | 第9-11页 |
1.实验动物 | 第9页 |
2.主要仪器、耗材及试剂 | 第9-11页 |
(二)方法 | 第11-19页 |
1.中药含药血清提取 | 第11-12页 |
2.HSC分离、培养及鉴定 | 第12-14页 |
3.中药含药血清及Notch通路干预剂浓度筛选 | 第14-15页 |
4.SEC分离、培养及鉴定 | 第15页 |
5.细胞分组及药物干预 | 第15-16页 |
6.观测指标 | 第16-18页 |
7.统计方法 | 第18-19页 |
二、结果 | 第19-32页 |
(一)大鼠一般情况及肝组织病理形态学观察 | 第19页 |
1.一般情况 | 第19页 |
2.肝组织病理形态学变化 | 第19页 |
(二)SEC、HSC计数及鉴定 | 第19-20页 |
1.SEC、HSC计数及形态观察 | 第19页 |
2.SEC、HSC免疫荧光鉴定 | 第19-20页 |
(三)中药含药血清及药物浓度筛选 | 第20-21页 |
1.中药含药血清浓度筛选 | 第20页 |
2.药物浓度筛选 | 第20-21页 |
(四)HSC-SEC共培养下各组HSC活力检测 | 第21-22页 |
(五)各组CD31、vWF、ColⅣ、Notch1、Jagged1、Hes1蛋白表达量 | 第22-28页 |
1.造模2周组各指标蛋白相对表达量 | 第22-24页 |
2.造模4周组各指标蛋白相对表达量 | 第24-26页 |
3.造模8周组各指标蛋白相对表达量 | 第26-28页 |
(六)各组Notch1、Jagged1、Hes1mRNA表达量 | 第28-32页 |
1.造模2周组各指标mRNA相对表达量 | 第28-29页 |
2.造模4周组各指标mRNA相对表达量 | 第29-30页 |
3.造模8周组各指标mRNA相对表达量 | 第30-32页 |
三、分析与讨论 | 第32-42页 |
(一)肝纤维化动物模型诱导方法 | 第32-33页 |
1.肝纤维化不同造模方法比较 | 第32页 |
2.CCl4法诱导大鼠肝纤维化的病理分期讨论 | 第32-33页 |
(二)HSC活化是肝纤维化的中心环节 | 第33-34页 |
1.HSC是ECM主要来源 | 第33页 |
2.肝纤维化逆转重点在于抑制HSC活化 | 第33-34页 |
3.原代HSC分离、鉴定与培养讨论 | 第34页 |
(三)病理性血管新生是肝纤维化的主要特征 | 第34-39页 |
1.SEC失窗孔是多种肝脏疾病的始动环节 | 第35-36页 |
2.Notch通路与肝纤维化病理性血管新生密切相关 | 第36-39页 |
(四)疏肝健脾活血方对HSC活化、SEC失窗孔及Notch通路的影响 | 第39-42页 |
1.中医对肝纤维化的认识 | 第39-40页 |
2.疏肝健脾活血方组方要义 | 第40页 |
3.疏肝健脾活血方对HSC活化、SEC失窗孔及Notch通路的影响 | 第40-42页 |
四、小结 | 第42-43页 |
结论 | 第43-44页 |
参考文献 | 第44-48页 |
附图 | 第48-51页 |
致谢 | 第51-52页 |
综述 | 第52-62页 |
参考文献 | 第58-62页 |