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疏肝健脾活血方调控HSC-SEC共培养Notch通路的作用机制研究

中英文对照第5-6页
摘要第6-7页
ABSTRACT第7页
前言第8-9页
一、材料与方法第9-19页
    (一)材料第9-11页
        1.实验动物第9页
        2.主要仪器、耗材及试剂第9-11页
    (二)方法第11-19页
        1.中药含药血清提取第11-12页
        2.HSC分离、培养及鉴定第12-14页
        3.中药含药血清及Notch通路干预剂浓度筛选第14-15页
        4.SEC分离、培养及鉴定第15页
        5.细胞分组及药物干预第15-16页
        6.观测指标第16-18页
        7.统计方法第18-19页
二、结果第19-32页
    (一)大鼠一般情况及肝组织病理形态学观察第19页
        1.一般情况第19页
        2.肝组织病理形态学变化第19页
    (二)SEC、HSC计数及鉴定第19-20页
        1.SEC、HSC计数及形态观察第19页
        2.SEC、HSC免疫荧光鉴定第19-20页
    (三)中药含药血清及药物浓度筛选第20-21页
        1.中药含药血清浓度筛选第20页
        2.药物浓度筛选第20-21页
    (四)HSC-SEC共培养下各组HSC活力检测第21-22页
    (五)各组CD31、vWF、ColⅣ、Notch1、Jagged1、Hes1蛋白表达量第22-28页
        1.造模2周组各指标蛋白相对表达量第22-24页
        2.造模4周组各指标蛋白相对表达量第24-26页
        3.造模8周组各指标蛋白相对表达量第26-28页
    (六)各组Notch1、Jagged1、Hes1mRNA表达量第28-32页
        1.造模2周组各指标mRNA相对表达量第28-29页
        2.造模4周组各指标mRNA相对表达量第29-30页
        3.造模8周组各指标mRNA相对表达量第30-32页
三、分析与讨论第32-42页
    (一)肝纤维化动物模型诱导方法第32-33页
        1.肝纤维化不同造模方法比较第32页
        2.CCl4法诱导大鼠肝纤维化的病理分期讨论第32-33页
    (二)HSC活化是肝纤维化的中心环节第33-34页
        1.HSC是ECM主要来源第33页
        2.肝纤维化逆转重点在于抑制HSC活化第33-34页
        3.原代HSC分离、鉴定与培养讨论第34页
    (三)病理性血管新生是肝纤维化的主要特征第34-39页
        1.SEC失窗孔是多种肝脏疾病的始动环节第35-36页
        2.Notch通路与肝纤维化病理性血管新生密切相关第36-39页
    (四)疏肝健脾活血方对HSC活化、SEC失窗孔及Notch通路的影响第39-42页
        1.中医对肝纤维化的认识第39-40页
        2.疏肝健脾活血方组方要义第40页
        3.疏肝健脾活血方对HSC活化、SEC失窗孔及Notch通路的影响第40-42页
四、小结第42-43页
结论第43-44页
参考文献第44-48页
附图第48-51页
致谢第51-52页
综述第52-62页
    参考文献第58-62页

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