| 致谢 | 第8-9页 |
| 摘要 | 第9-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 第一章 绪论 | 第12-28页 |
| 1.1 外源添加物对食药用菌液体发酵影响的研究进展 | 第12-19页 |
| 1.1.1 中药 | 第12-14页 |
| 1.1.2 生长因子 | 第14-15页 |
| 1.1.3 油脂类物质 | 第15-16页 |
| 1.1.4 信号分子 | 第16-17页 |
| 1.1.5 添加物对食药用菌液体发酵代谢调控的机理 | 第17-19页 |
| 1.2 蝉花的研究进展 | 第19-23页 |
| 1.2.1 蝉花简介 | 第19页 |
| 1.2.2 蝉花的活性物质与药理作用 | 第19-20页 |
| 1.2.3 蝉花的人工培养 | 第20-21页 |
| 1.2.4 蝉花多糖的研究概况 | 第21-23页 |
| 1.3 多糖的结构研究方法 | 第23-27页 |
| 1.3.1 多糖的一级结构解析方法 | 第23-25页 |
| 1.3.2 多糖高级结构的研究方法 | 第25-27页 |
| 1.4 本研究的目的、意义和主要内容 | 第27-28页 |
| 1.4.1 研究目的及意义 | 第27页 |
| 1.4.2 主要内容 | 第27-28页 |
| 第二章 蝉拟青霉的深层发酵 | 第28-36页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第28-29页 |
| 2.1.1 材料 | 第28页 |
| 2.1.2 试剂与药品 | 第28-29页 |
| 2.1.3 仪器 | 第29页 |
| 2.2 方法 | 第29-30页 |
| 2.2.1 中药水提物制备 | 第29页 |
| 2.2.2 摇瓶液体培养 | 第29页 |
| 2.2.3 菌丝体生物量的测定 | 第29-30页 |
| 2.2.4 多糖含量的测定 | 第30页 |
| 2.2.5 对DPPH自由基清除能力的测定 | 第30页 |
| 2.2.6 数据统计分析 | 第30页 |
| 2.3 结果与分析 | 第30-35页 |
| 2.3.1 不同中药水提物对蝉拟青霉发酵的影响 | 第30-32页 |
| 2.3.2 不同中药水提物对蝉拟青霉多糖活性的影响 | 第32-33页 |
| 2.3.3 不同添加量的枸杞水提物对蝉拟青霉液体发酵的影响 | 第33-35页 |
| 本章小结 | 第35-36页 |
| 第三章 蝉拟青霉胞内多糖的分离纯化及结构研究 | 第36-62页 |
| 3.1 材料与仪器 | 第37-38页 |
| 3.1.1 材料 | 第37页 |
| 3.1.2 试剂与药品 | 第37页 |
| 3.1.3 主要仪器 | 第37-38页 |
| 3.2 方法 | 第38-43页 |
| 3.2.1 蝉拟青霉胞内多糖的分离纯化 | 第38页 |
| 3.2.2 分子量及纯度鉴定 | 第38-40页 |
| 3.2.3 单糖组成 | 第40页 |
| 3.2.4 红外光谱分析 | 第40页 |
| 3.2.5 甲基化反应及GC/MS分析 | 第40-42页 |
| 3.2.6 核磁共振光谱分析 | 第42页 |
| 3.2.7 PCIPS2在溶液中的构象 | 第42-43页 |
| 3.2.8 PCIPS2的原子力显微镜形貌 | 第43页 |
| 3.3 结果与分析 | 第43-61页 |
| 3.3.1 蝉拟青霉胞内多糖的分离纯化 | 第43-45页 |
| 3.3.2 分子量及纯度鉴定 | 第45-46页 |
| 3.3.3 单糖组成 | 第46-47页 |
| 3.3.4 红外光谱分析 | 第47-48页 |
| 3.3.5 甲基化分析 | 第48-49页 |
| 3.3.6 核磁分析 | 第49-54页 |
| 3.3.7 PCIPS2在溶液中的构象 | 第54-58页 |
| 3.3.8 PCIPS2的原子力显微镜形貌 | 第58-61页 |
| 本章小结 | 第61-62页 |
| 第四章 全文总结 | 第62-64页 |
| 4.1 论文总结 | 第62-63页 |
| 4.2 本文创新点 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-77页 |
| 硕士期间科研成果 | 第77页 |
