| 中文摘要 | 第8-13页 |
| ABSTRACT | 第13-18页 |
| 符号说明 | 第19-21页 |
| 前言 | 第21-26页 |
| 幽门螺杆菌及其感染与治疗 | 第21页 |
| 细菌的多耐药性及生物膜的作用 | 第21-23页 |
| (p)ppGpp与细菌耐药性 | 第23-24页 |
| 外排泵系统 | 第24-26页 |
| 实验材料与方法 | 第26-48页 |
| 1. 实验材料 | 第26-34页 |
| 1.1 菌株 | 第26页 |
| 1.2 细菌培养基 | 第26-27页 |
| 1.3 实验所用抗生素 | 第27-28页 |
| 1.4 质粒及引物 | 第28-29页 |
| 1.5 实验所用试剂及配制 | 第29-33页 |
| 1.6 实验仪器 | 第33-34页 |
| 2. 实验方法 | 第34-48页 |
| 2.1 细菌培养 | 第34-35页 |
| 2.2 扫描电镜(SEM) | 第35页 |
| 2.3 激光共聚焦(CLSM) | 第35-36页 |
| 2.4 基因表达情况的测定 | 第36-38页 |
| 2.5 最小抑菌浓度(MIC) | 第38-39页 |
| 2.6 生长曲线和生长抑制曲线 | 第39页 |
| 2.7 构建基因敲除株 | 第39-46页 |
| 2.8 多重耐药突变体(MDR)的诱导 | 第46页 |
| 2.9 荧光积累试验 | 第46-47页 |
| 2.10 (p)ppGpp积累量的检测 | 第47页 |
| 2.11 统计学分析 | 第47-48页 |
| 结果 | 第48-63页 |
| 1. spoT参与幽门螺杆菌生物膜形成与多耐药 | 第48-51页 |
| 1.1 spoT参与生物膜的形成 | 第48-50页 |
| 1.2 spoT参与多耐药 | 第50-51页 |
| 2. 比较野生株与△spoT外排能力 | 第51-52页 |
| 3. qRT-PCR筛选参与幽门螺杆菌生物膜与多耐药形成的外排泵基因 | 第52-54页 |
| 4. 幽门螺杆菌中spoT调节GluP的转录 | 第54-56页 |
| 5 △gluP突变株的构建 | 第56页 |
| 6. GluP参与幽门螺杆菌外排 | 第56-57页 |
| 7. Glup参与幽门螺杆菌生物膜形成与多耐药 | 第57-61页 |
| 7.1 Glup参与生物膜的形成 | 第57-58页 |
| 7.2 GluP参与幽门螺杆菌的多耐药 | 第58-61页 |
| 7.2.1 最小抑菌浓度(MIC)的测定 | 第58-59页 |
| 7.2.2 生长曲线和生长抑制曲线 | 第59-61页 |
| 7.2.3 GluP在幽门螺杆菌临床分离株中的表达水平 | 第61页 |
| 8. spoT影响σ~(54)调控Glup | 第61-62页 |
| 9. GluP影响糖转运参与生物膜的形成 | 第62-63页 |
| 讨论 | 第63-67页 |
| 结论 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-72页 |
| 致谢 | 第72-74页 |
| 攻读硕士学位期间发表的文章 | 第74-75页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第75页 |