绵羊真皮间充质干/祖细胞的分离培养及生物学特性研究
| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第12-18页 |
| 1.1 引言 | 第12-13页 |
| 1.2 DMS/PCs的来源和发现 | 第13页 |
| 1.3 DMS/PCs的生物学特性 | 第13-14页 |
| 1.3.1 DMS/PCs的形态学特征 | 第13页 |
| 1.3.2 DMS/PCs的增殖特性 | 第13-14页 |
| 1.4 DMS/PCs的表面标记物 | 第14-15页 |
| 1.5 DMS/PCs的分离培养 | 第15-16页 |
| 1.6 DMS/PCs的体外诱导分化潜能 | 第16-17页 |
| 1.6.1 DMS/PCs脂肪细胞诱导分化 | 第16页 |
| 1.6.2 DMS/PCs成骨细胞诱导分化 | 第16页 |
| 1.6.3 DMS/PCs神经元样细胞诱导分化 | 第16-17页 |
| 1.7 应用前景 | 第17-18页 |
| 第二章 绵羊真皮间充质干/祖细胞分离、培养与鉴定 | 第18-34页 |
| 2.1 试验材料 | 第18-20页 |
| 2.1.1 试验对象 | 第18页 |
| 2.1.2 试验主要仪器和设备 | 第18-19页 |
| 2.1.3 试验主要试剂和配制 | 第19-20页 |
| 2.2 试验方法 | 第20-25页 |
| 2.2.1 绵羊DMS/PCs的分离培养 | 第20-21页 |
| 2.2.2 绵羊DMS/PCs培养体系的优化 | 第21页 |
| 2.2.3 绵羊DMS/PCs的传代培养 | 第21-22页 |
| 2.2.4 绵羊DMS/PCs的冻存与复苏 | 第22页 |
| 2.2.5 绵羊DMS/PCs的表面标记物检测 | 第22-25页 |
| 2.3 试验结果 | 第25-32页 |
| 2.3.1 绵羊DMS/PCs的分离培养 | 第25-26页 |
| 2.3.2 绵羊DMS/PCs培养体系优化 | 第26-27页 |
| 2.3.3 绵羊DMS/PCs的传代培养 | 第27-30页 |
| 2.3.4 绵羊DMS/PCs的冻存与复苏 | 第30页 |
| 2.3.5 绵羊DMS/PCs表面标记物检测 | 第30-32页 |
| 2.4 讨论 | 第32-33页 |
| 2.4.1 绵羊DMS/PCs的分离培养 | 第32-33页 |
| 2.4.2 绵羊DMS/PCs的鉴定 | 第33页 |
| 2.5 本章小结 | 第33-34页 |
| 第三章 绵羊真皮间充质干/祖细胞的生物学特性研究 | 第34-51页 |
| 3.1 试验材料 | 第34-36页 |
| 3.1.1 试验对象 | 第34页 |
| 3.1.2 试验主要仪器设备 | 第34页 |
| 3.1.3 试验主要试剂及配制 | 第34-36页 |
| 3.2 试验方法 | 第36-39页 |
| 3.2.1 绵羊DMS/PCs冻存前后活率 | 第36页 |
| 3.2.2 绵羊DMS/PCs生长曲线绘制 | 第36页 |
| 3.2.3 绵羊DMS/PCs细胞周期检测 | 第36-37页 |
| 3.2.4 绵羊DMS/PCs核型分析 | 第37页 |
| 3.2.5 绵羊DMS/PCs诱导分化及鉴定 | 第37-39页 |
| 3.3 结果与分析 | 第39-46页 |
| 3.3.1 绵羊DMS/PCs冻存前后活率计算 | 第39-40页 |
| 3.3.2 绵羊DMS/PCs生长曲线绘制 | 第40-41页 |
| 3.3.3 绵羊DMS/PCs的细胞周期检测 | 第41-42页 |
| 3.3.4 绵羊DMS/PCs的核型分析 | 第42-43页 |
| 3.3.5 绵羊DMS/PCs的诱导分化及鉴定 | 第43-46页 |
| 3.4 讨论 | 第46-50页 |
| 3.4.1 绵羊DMS/PC生长和增殖特点 | 第46-47页 |
| 3.4.2 绵羊DMS/PC核型分析 | 第47-48页 |
| 3.4.3 绵羊DMS/PC诱导分化及鉴定 | 第48-50页 |
| 3.5 本章小结 | 第50-51页 |
| 第四章 全文结论 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-58页 |
| 附录 | 第58-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
| 作者简介 | 第60页 |
