| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 第1章 绪论 | 第13-26页 |
| 1.1 课题来源 | 第13页 |
| 1.2 本课题的立题背景和创新性 | 第13-14页 |
| 1.2.1 立题背景 | 第13-14页 |
| 1.2.2 创新性 | 第14页 |
| 1.3 胰腺癌治疗现状 | 第14-15页 |
| 1.3.1 胰腺癌治疗药物 | 第14-15页 |
| 1.4 雷公藤甲素抗肿瘤机制研究进展 | 第15-22页 |
| 1.4.1 诱导凋亡 | 第16-19页 |
| 1.4.2 诱导自噬途径 | 第19-20页 |
| 1.4.3 抑制转移 | 第20-21页 |
| 1.4.4 抑制血管新生 | 第21页 |
| 1.4.5 抑制细胞周期 | 第21-22页 |
| 1.5 抗肿瘤靶向制剂研究进展 | 第22-23页 |
| 1.5.1 靶向制剂的分类 | 第22-23页 |
| 1.6 核仁素适配体及核仁素介绍 | 第23-26页 |
| 1.6.1 适配体简述 | 第23-24页 |
| 1.6.2 核仁素适配体研究现状 | 第24页 |
| 1.6.3 核仁素研究现状 | 第24-26页 |
| 第2章 雷公藤甲素-核仁素适配体偶合物对胰腺癌细胞增殖抑制作用观察 | 第26-33页 |
| 2.1 实验仪器和材料 | 第26-28页 |
| 2.1.1 细胞系 | 第26页 |
| 2.1.2 主要药物和试剂 | 第26页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第26-27页 |
| 2.1.4 药品和主要试剂配制 | 第27-28页 |
| 2.1.5 细胞培养用品的准备 | 第28页 |
| 2.2 实验方法 | 第28-29页 |
| 2.2.1 细胞培养、传代及冻存 | 第28页 |
| 2.2.2 CCK-8法检测四种药物对胰腺癌细胞MIA PaCa-2生长抑制作用 | 第28-29页 |
| 2.3 数据处理及统计学方法 | 第29页 |
| 2.4 实验结果与讨论 | 第29-32页 |
| 2.4.1 偶合物、雷公藤甲素、核仁素适配体对胰腺癌细胞MIA PaCa-2的体外增殖抑制作用 | 第29-31页 |
| 2.4.2 偶合物和吉西他滨对吉西他滨耐药细胞MIA PaCa-2的细胞毒性比较 | 第31-32页 |
| 2.5 小结 | 第32-33页 |
| 第3章 雷公藤甲素-核仁素适配体偶合物对胰腺癌细胞凋亡诱导作用观察 | 第33-42页 |
| 3.1 实验仪器和材料 | 第33-34页 |
| 3.1.1 细胞系 | 第33页 |
| 3.1.2 主要药物和试剂 | 第33页 |
| 3.1.3 主要仪器 | 第33-34页 |
| 3.2 实验方法 | 第34-37页 |
| 3.2.1 流式细胞仪Annexin V/PI双染色法检测凋亡 | 第34-35页 |
| 3.2.2 Caspase-3活性检测 | 第35-37页 |
| 3.3 结果和讨论 | 第37-40页 |
| 3.3.1 Annexin V/PI双染色法检测凋亡结果 | 第37-38页 |
| 3.3.2 Caspase-3活性检测结果 | 第38-40页 |
| 3.4 小结 | 第40-42页 |
| 第4章 雷公藤甲素-核仁素适配体偶合物对MIA PaCa-2细胞中HSP70表达影响 | 第42-51页 |
| 4.1 实验仪器和材料 | 第42-44页 |
| 4.1.1 细胞系 | 第42页 |
| 4.1.2 主要药物和试剂 | 第42-43页 |
| 4.1.3 主要仪器 | 第43-44页 |
| 4.1.4 主要试剂配制 | 第44页 |
| 4.2 实验方法 | 第44-47页 |
| 4.2.1 细胞预处理 | 第44页 |
| 4.2.2 蛋白提取 | 第44-45页 |
| 4.2.3 蛋白浓度测定 | 第45页 |
| 4.2.4 上样蛋白预处理 | 第45页 |
| 4.2.5 灌胶 | 第45-46页 |
| 4.2.6 电泳 | 第46页 |
| 4.2.7 转膜 | 第46页 |
| 4.2.8 免疫反应 | 第46页 |
| 4.2.9 显色反应 | 第46-47页 |
| 4.3 实验结果和讨论 | 第47-49页 |
| 4.3.1 蛋白含量测定结果 | 第47-48页 |
| 4.3.2 偶合物对MIA PaCa-2细胞中HSP70表达的影响 | 第48-49页 |
| 4.4 小结 | 第49-51页 |
| 结论 | 第51-52页 |
| 致谢 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-66页 |
| 攻读学位期间发表的论文及参加的科研课题 | 第66页 |
