| 致谢 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 缩略词表 | 第11-13页 |
| 目录 | 第13-16页 |
| 第一章 文献综述 | 第16-39页 |
| 1.1 植物线粒体交替呼吸与交替氧化酶 | 第16-21页 |
| 1.1.1 植物线粒体呼吸链 | 第17页 |
| 1.1.2 植物线粒体交替呼吸的运行机制及调控 | 第17-18页 |
| 1.1.3 植物线粒体交替呼吸链末端氧化酶AOX | 第18-19页 |
| 1.1.4 植物线粒体交替呼吸途径末端氧化酶在植物与病毒互作中的作用 | 第19-21页 |
| 1.2 活性氧ROS与AOX的作用关系 | 第21-31页 |
| 1.2.1 ROS的产生机制 | 第21-25页 |
| 1.2.2 ROS的清除体系 | 第25-27页 |
| 1.2.3 ROS在植物抗病反应中的作用 | 第27-29页 |
| 1.2.4 ROS与AOX在植物与病原物互作中的关系 | 第29-31页 |
| 1.3 真菌线粒体交替呼吸途径及AOX基因的表达 | 第31-37页 |
| 1.3.1 真菌交替呼吸链 | 第31-32页 |
| 1.3.2 真菌中交替呼吸链的末端氧化酶AOX | 第32-33页 |
| 1.3.3 真菌交替呼吸链的末端氧化酶AOX的活性调控 | 第33-35页 |
| 1.3.4 AOX在真菌遭受氧化胁迫时的作用 | 第35-37页 |
| 1.3.5 真菌交替呼吸链的末端氧化酶AOX在真菌与杀菌剂互作中的作用 | 第37页 |
| 研究目的与意义 | 第37-39页 |
| 第二章 过氧化氢酶抑制剂3-AT能够降低转正义AOX烟草的抗病性 | 第39-61页 |
| 2.1 材料与方法 | 第39-43页 |
| 2.1.1 材料培养 | 第39-40页 |
| 2.1.2 材料处理 | 第40页 |
| 2.1.3 培养基与缓冲液的配制 | 第40-43页 |
| 2.2 实验方法 | 第43-47页 |
| 2.2.1 烟草TMV粒子的提取 | 第43页 |
| 2.2.2 呼吸速率的测定 | 第43-44页 |
| 2.2.3 总蛋白的提取 | 第44页 |
| 2.2.4 烟草线粒体蛋白的提取 | 第44页 |
| 2.2.5 过氧化氢酶活性的测定 | 第44-45页 |
| 2.2.6 叶片组织H_2O_2含量的测定 | 第45页 |
| 2.2.7 蛋白SDS-PAGE电泳 | 第45页 |
| 2.2.8 电转移 | 第45-46页 |
| 2.2.9 蛋白杂交 | 第46页 |
| 2.2.10 显色反应 | 第46-47页 |
| 2.2.11 统计分析 | 第47页 |
| 2.3 结果与分析 | 第47-57页 |
| 2.3.1 AOX表达量不同的烟草对TMV基础抗性相同 | 第47-49页 |
| 2.3.2 外源H_2O_2不能改变三种转基因烟草的基础抗病性 | 第49-50页 |
| 2.3.3 3-AT预处理能够增加Sn21烟草对TMV侵染的敏感性 | 第50-51页 |
| 2.3.4 3-AT预处理能够增加H_2O_2对TMV侵染烟草的敏感性 | 第51-52页 |
| 2.3.5 GSH能够增强Sn21烟草对TMV的抗性 | 第52-54页 |
| 2.3.6 3-AT能够降低GSH对TMV侵染Sn21烟草的敏感性 | 第54-55页 |
| 2.3.7 3-AT预处理能够增加烟草叶片中内源H_2O_2的含量 | 第55-56页 |
| 2.3.8 3-AT能够降低烟草中过氧化氢酶含量 | 第56-57页 |
| 2.3.9 3-AT对三种基因型烟草的交替呼吸途径的影响 | 第57页 |
| 2.4 讨论 | 第57-61页 |
| 第三章 AOX参与核盘菌生长发育以及氧化胁迫响应的调控 | 第61-73页 |
| 3.1 材料与方法 | 第61-64页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第61页 |
| 3.1.2 核盘菌培养及处理 | 第61-62页 |
| 3.1.3 核盘菌生长速率的测定 | 第62页 |
| 3.1.4 核盘菌菌核形成情况 | 第62页 |
| 3.1.5 核盘菌菌丝呼吸速率的测定 | 第62-63页 |
| 3.1.6 核盘菌总RNA的提取 | 第63页 |
| 3.1.7 Real time RT-PCR分析基因相对表达量 | 第63页 |
| 3.1.8 统计分析 | 第63-64页 |
| 3.2 结果与分析 | 第64-69页 |
| 3.2.1 AOX的抑制剂SHAM对菌丝生长速率的影响 | 第64页 |
| 3.2.2 SHAM对菌丝生长形态的影响 | 第64-66页 |
| 3.2.3 核盘菌存在交替呼吸途径 | 第66-67页 |
| 3.2.4 H_2O_2对核盘菌呼吸活性的影响 | 第67页 |
| 3.2.5 H_2O_2对核盘菌AOX mRNA转录水平的影响 | 第67-68页 |
| 3.2.6 H_2O_2对核盘菌菌丝生长速度以及菌核形成情况的影响 | 第68-69页 |
| 3.4 讨论 | 第69-73页 |
| 第四章 交替氧化酶参与核盘菌对杀菌剂敏感性作用中的调控 | 第73-82页 |
| 4.1 材料与方法 | 第73-74页 |
| 4.1.1 试验材料与培养方法 | 第73页 |
| 4.1.2 供试药剂 | 第73页 |
| 4.1.3 核盘菌对杀菌剂敏感性测定 | 第73-74页 |
| 4.1.4 菌丝呼吸速率的测定 | 第74页 |
| 4.1.5 总RNA提取和Real time PCR分析 | 第74页 |
| 4.1.6 统计分析 | 第74页 |
| 4.2 实验结果与分析 | 第74-79页 |
| 4.2.1 核盘菌对各杀菌剂敏感性测定 | 第74-75页 |
| 4.2.2 AOX参与调控核盘菌对杀菌剂敏感性测定 | 第75-76页 |
| 4.2.3 各杀菌剂对核盘菌菌丝线粒体呼吸链的直接作用 | 第76-77页 |
| 4.2.4 各杀菌剂对核盘菌线粒体呼吸电子传递链的次生效应 | 第77页 |
| 4.2.5 各杀菌剂预处理菌丝对核盘菌AOX mRNA转录水平的影响 | 第77-79页 |
| 4.3 讨论 | 第79-82页 |
| 第五章 总结 | 第82-83页 |
| 参考文献 | 第83-98页 |
