| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 符号说明 | 第10-11页 |
| 前言 | 第11-14页 |
| 研究现状、成果 | 第11-13页 |
| 研究目的、方法 | 第13-14页 |
| 一、脐带间充质干细胞的原代分离、培养与鉴定 | 第14-25页 |
| 前言 | 第14-15页 |
| 1.1 对象和方法 | 第15-17页 |
| 1.1.1 实验材料 | 第15-16页 |
| 1.1.2 试验方法 | 第16-17页 |
| 1.2 结果 | 第17-20页 |
| 1.2.1 人UCMSCs的分离培养结果 | 第17-18页 |
| 1.2.2 表面标志蛋白鉴定 | 第18-19页 |
| 1.2.3 向神经诱导后的细胞形态变化 | 第19-20页 |
| 1.2.4 细胞免疫荧光结果 | 第20页 |
| 1.3 讨论 | 第20-24页 |
| 1.4 小结 | 第24-25页 |
| 二、tsSV40LT抗原介导温度敏感型干细胞系的建立及其生物学特征改变 | 第25-46页 |
| 2.1 对象和方法 | 第26-35页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第26-27页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第27-35页 |
| 2.2 结果 | 第35-41页 |
| 2.2.1 RT-PCR方法鉴定tsSV40LT抗原基因的表达 | 第35-36页 |
| 2.2.2 细胞生长曲线结果 | 第36-37页 |
| 2.2.3 细胞周期检测结果 | 第37页 |
| 2.2.4 端粒酶活性检测结果 | 第37-38页 |
| 2.2.5 Cyclind,CDK2和P16表达 | 第38-39页 |
| 2.2.6 Nestin,NSE和GFAP的表达 | 第39-40页 |
| 2.2.7 血清依赖实验结果 | 第40页 |
| 2.2.8 软琼脂克隆实验结果 | 第40-41页 |
| 2.3 讨论 | 第41-45页 |
| 2.4 小结 | 第45-46页 |
| 三、亚低温联合温度敏感型干细胞移植治疗脑创伤的实验研究 | 第46-68页 |
| 3.1 对象和方法 | 第47-52页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第47页 |
| 3.1.2 试验方法 | 第47-52页 |
| 3.2 结果 | 第52-60页 |
| 3.2.1 BDNF分泌时相 | 第52-53页 |
| 3.2.2 BrdU的体内外标记 | 第53-54页 |
| 3.2.3 ts-UCMSCs在低温与常温脑组织内的增殖活性 | 第54-56页 |
| 3.2.4 ts-UCMSCs在不同脑温下的细胞分化 | 第56-57页 |
| 3.2.5 BDNF-UCMSCs移植组脑创伤灶边缘BDNF、GFAP和NSE表达 | 第57-58页 |
| 3.2.6 组织原位凋亡检测 | 第58-59页 |
| 3.2.7 动物神经功能缺陷综合评分 | 第59-60页 |
| 3.3 讨论 | 第60-67页 |
| 3.3.1 干细胞的体内标记示踪 | 第61页 |
| 3.3.2 干细胞项创伤灶的定向迁移特征 | 第61-62页 |
| 3.3.3 干细胞的定向诱导分化 | 第62-63页 |
| 3.3.4 脑源性神经营养因子在脑创伤中的应用价值 | 第63-64页 |
| 3.3.5 颅脑损伤动物模型 | 第64-67页 |
| 3.4 小结 | 第67-68页 |
| 全文结论 | 第68-69页 |
| 论文创新点 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-76页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第76-77页 |
| 附录 | 第77-85页 |
| 综述 | 第77-82页 |
| 参考文献 | 第82-85页 |
| 致谢 | 第85页 |
