| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 1 引言 | 第10-15页 |
| 1.1 毛色遗传的研究现状 | 第10-11页 |
| 1.2 Agouti 基因研究现状 | 第11-13页 |
| 1.2.1 Agouti 基因作用机理 | 第11页 |
| 1.2.2 Agouti 基因的研究现状 | 第11-12页 |
| 1.2.3 山羊 Agouti 基因的研究现状 | 第12-13页 |
| 1.2.4 本课题组对山羊 Agouti 基因研究成果 | 第13页 |
| 1.3 本研究的目的、意义及主要内容 | 第13-15页 |
| 1.3.1 研究的目的和意义 | 第13页 |
| 1.3.2 研究的主要内容 | 第13-15页 |
| 2 材料与方法 | 第15-29页 |
| 2.1 主要试验材料及设备 | 第15-19页 |
| 2.1.1 试验山羊样品来源及采样方法 | 第15页 |
| 2.1.2 药品和酶 | 第15-16页 |
| 2.1.3 主要试验仪器与设备 | 第16-17页 |
| 2.1.4 试剂的配制 | 第17-18页 |
| 2.1.5 分析软件及工具 | 第18-19页 |
| 2.2 试验方法和步骤 | 第19-29页 |
| 2.2.1 山羊皮肤组织 RNA 提取、纯化、检测和反转录 | 第19-21页 |
| 2.2.2 实时荧光定量 PCR 实验 | 第21-25页 |
| 2.2.3 山羊皮肤组织基因组的提取与检测 | 第25-26页 |
| 2.2.4 Agouti 基因单核苷酸多态性的分析 | 第26-29页 |
| 3 结果与分析 | 第29-40页 |
| 3.1 不同毛色山羊 Agouti 基因 mRNA 的差异表达研究 | 第29-33页 |
| 3.1.1 山羊皮肤组织 RNA 提取效果 | 第29页 |
| 3.1.2 产物条带的回收以及与质粒的重组 | 第29-30页 |
| 3.1.3 重组质粒的提取 | 第30-31页 |
| 3.1.4 建立的标准曲线 | 第31-32页 |
| 3.1.5 样本 mRNA 的 RT-PCR 检测 | 第32-33页 |
| 3.1.6 样本 mRNA 表达量分析 | 第33页 |
| 3.2 不同毛色山羊 Agouti 基因 5’UTR 变异对表达影响的研究 | 第33-40页 |
| 3.2.1 基因组 DNA 的提取结果 | 第33-34页 |
| 3.2.2 Agouti 基因 5’UTR 部分序列的扩增与序列及群体分析 | 第34-38页 |
| 3.2.3 Agouti 基因 5’UTR 区位点突变对表达量的影响 | 第38页 |
| 3.2.4 5’UTR 区各多态位点的不同基因型与不同毛色互作效应对 Agouti 基因 mRNA 表达量的影响 | 第38-40页 |
| 4 讨论 | 第40-45页 |
| 4.1 样本选取问题 | 第40页 |
| 4.2 RNA 的提取 | 第40页 |
| 4.3 DNA 的提取 | 第40页 |
| 4.4 PCR 的扩增 | 第40-41页 |
| 4.5 不同毛色山羊皮肤组织 Agouti 基因 mRNA 表达量 | 第41-42页 |
| 4.6 启动子区确定依据 | 第42-43页 |
| 4.7 Agouti 基因启动子区多态位点群体遗传学分析 | 第43页 |
| 4.8 Agouti 基因 5’UTR 区多态位点的不同基因型的 mRNA 表达量和毛色与基因型互作对表达的影响 | 第43-45页 |
| 5 结论 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-50页 |
| 在读期间发表的论文 | 第50-51页 |
| 作者简介 | 第51-52页 |
| 致谢 | 第52-53页 |
