| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-10页 |
| 1 前言 | 第10-20页 |
| ·黏膜免疫概述 | 第10-12页 |
| ·黏膜免疫系统 | 第10-11页 |
| ·黏膜免疫的基本特点 | 第11-12页 |
| ·SIgA与黏膜免疫 | 第12-15页 |
| ·IgA的结构及其分类 | 第12-13页 |
| ·SIgA的合成调节与代谢 | 第13-14页 |
| ·SIgA免疫体系的生物学功能 | 第14-15页 |
| ·SIgA的分离纯化 | 第15-16页 |
| ·猪肺炎支原体及其危害性概述 | 第16-18页 |
| ·黏膜免疫疫苗 | 第18-19页 |
| ·本研究的目的意义 | 第19-20页 |
| 2 试验材料 | 第20-23页 |
| ·试验动物、菌株 | 第20页 |
| ·SDS-PAGE相关溶液 | 第20页 |
| ·ELISA相关溶液 | 第20-21页 |
| ·离子交换层析相关溶液 | 第21页 |
| ·猪肺炎支原体培养基 | 第21页 |
| ·主要仪器设备 | 第21-22页 |
| ·主要试剂 | 第22-23页 |
| 3. 试验方法 | 第23-28页 |
| ·猪SIgA的提取 | 第23页 |
| ·猪肠黏液收集 | 第23页 |
| ·SIgA的粗提 | 第23页 |
| ·SIgA的纯化 | 第23页 |
| ·兔抗猪SIgA免疫血清的制备 | 第23页 |
| ·兔抗猪(SIgA)IgG的提纯 | 第23-24页 |
| ·SDS-PAGE鉴定 | 第24页 |
| ·兔抗猪(SIgA)IgG-HRP酶标抗体的制备 | 第24-25页 |
| ·直接ELISA方法的建立 | 第25-26页 |
| ·直接ELISA操作程序 | 第25页 |
| ·直接ELISA反应条件的建立与优化 | 第25-26页 |
| ·直接ELISA阴阳界限的确定 | 第26页 |
| ·直接ELISA精密度试验 | 第26页 |
| ·SIgA浓度标准曲线的建立与回收率观察 | 第26页 |
| ·临床试验 | 第26-27页 |
| ·攻毒菌液的制备 | 第26页 |
| ·试验分组、免疫与攻毒 | 第26-27页 |
| ·取样 | 第27页 |
| ·ELISA检测抗体效价 | 第27页 |
| ·数据分析 | 第27-28页 |
| 4 试验结果 | 第28-38页 |
| ·猪SIgA的提取 | 第28-29页 |
| ·猪肠黏液SIgA得率 | 第28页 |
| ·SIgA的纯化及鉴定 | 第28-29页 |
| ·兔抗猪(SIgA)IgG的纯化与鉴定 | 第29页 |
| ·兔抗猪(SIgA)IgG-HRP酶标抗体的制备 | 第29-30页 |
| ·直接ELISA方法的建立 | 第30-35页 |
| ·样品最佳包被浓度和酶标抗体工作浓度的确定 | 第30页 |
| ·封闭处理对检测的影响 | 第30-32页 |
| ·酶标抗体作用时间的确定 | 第32-33页 |
| ·直接ELISA阴阳界限的确定 | 第33页 |
| ·直接ELISA精密度试验 | 第33-34页 |
| ·SIgA浓度标准曲线的建立与回收率观察 | 第34-35页 |
| ·临床试验 | 第35-38页 |
| 5.讨论 | 第38-43页 |
| ·关于SIgA的提取 | 第38-39页 |
| ·关于兔抗猪(SIgA)IgG的纯化 | 第39页 |
| ·关于兔抗猪(SIgA)IgG-HRP酶标抗体的制备 | 第39-40页 |
| ·直接ELISA试验方法研究 | 第40-41页 |
| ·临床试验 | 第41-43页 |
| 6.结论 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-56页 |
| 致谢 | 第56页 |