| 摘要 | 第3-6页 |
| ABSTRACT | 第6-9页 |
| 英文缩略语 | 第10-16页 |
| 第1章 绪论 | 第16-43页 |
| 1.1 概述 | 第16-17页 |
| 1.2 灵芝的化学成分与生物功能 | 第17-19页 |
| 1.2.1 三萜类化合物 | 第17-18页 |
| 1.2.2 氨基酸与多肽类化合物 | 第18页 |
| 1.2.3 其他有效成分 | 第18-19页 |
| 1.3 灵芝多糖研究进展 | 第19-29页 |
| 1.3.1 灵芝多糖的提取与分级 | 第19-21页 |
| 1.3.2 灵芝多糖的一级结构 | 第21-25页 |
| 1.3.3 灵芝多糖的溶液性质 | 第25-26页 |
| 1.3.4 灵芝多糖的生物活性 | 第26-27页 |
| 1.3.5 黑灵芝多糖生物活性研究进展 | 第27-29页 |
| 1.4 多糖结构与构象方法学研究进展 | 第29-39页 |
| 1.4.1 多糖结构分析方案 | 第29-30页 |
| 1.4.2 傅立叶变换红外光谱 | 第30-31页 |
| 1.4.3 多糖的甲基化分析 | 第31-33页 |
| 1.4.4 NMR技术在多糖结构分析中的应用 | 第33-36页 |
| 1.4.5 多糖的分子质量及分子质量分布 | 第36页 |
| 1.4.6 多糖的光散射性质分析 | 第36-37页 |
| 1.4.7 原子力显微镜 | 第37-38页 |
| 1.4.8 分子模拟技术在多糖结构分析中的应用 | 第38-39页 |
| 1.5 本课题研究的主要内容、创新点和科学意义 | 第39-43页 |
| 1.5.1 主要研究内容及其意义 | 第39-40页 |
| 1.5.2 本研究的创新性 | 第40-42页 |
| 1.5.3 本研究的总体思路 | 第42-43页 |
| 第2章 黑灵芝多糖的提取与分级 | 第43-63页 |
| 2.1 引言 | 第43-44页 |
| 2.2 实验部分 | 第44-50页 |
| 2.2.1 材料与试剂 | 第44页 |
| 2.2.2 仪器设备 | 第44-45页 |
| 2.2.3 实验方法 | 第45-50页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第50-61页 |
| 2.3.1 黑灵芝多糖的化学组成分析 | 第50-51页 |
| 2.3.2 黑灵芝水提多糖的超声波辅助提取条件优化 | 第51-54页 |
| 2.3.3 超声波辅助提取对黑灵芝提取残渣的影响 | 第54页 |
| 2.3.4 超声波辅助提取对黑灵芝多糖化学组成的影响 | 第54-55页 |
| 2.3.5 超声波辅助提取对黑灵芝多糖理化性质的影响 | 第55-57页 |
| 2.3.6 超声波辅助提取对黑灵芝多糖表观形貌的影响 | 第57-58页 |
| 2.3.7 黑灵芝水溶性多糖的分级结果 | 第58-60页 |
| 2.3.8 黑灵芝水溶性多糖PSG-1的阴离子交换色谱分离 | 第60-61页 |
| 2.4 本章小结 | 第61-63页 |
| 第3章 黑灵芝水溶性活性多糖的结构鉴定 | 第63-82页 |
| 3.1 引言 | 第63-64页 |
| 3.2 实验部分 | 第64-67页 |
| 3.2.1 材料与试剂 | 第64页 |
| 3.2.2 仪器设备 | 第64-65页 |
| 3.2.3 实验方法 | 第65-67页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第67-81页 |
| 3.3.1 单糖组成分析 | 第67-69页 |
| 3.3.2 甲基化结果分析 | 第69-72页 |
| 3.3.3 多步部分酸水解分析 | 第72-73页 |
| 3.3.4 核磁共振分析 | 第73-81页 |
| 3.4 本章小结 | 第81-82页 |
| 第4章 黑灵芝半乳聚糖类多糖的结构鉴定 | 第82-101页 |
| 4.1 引言 | 第82-83页 |
| 4.2 实验部分 | 第83-85页 |
| 4.2.1 材料与试剂 | 第83页 |
| 4.2.2 仪器设备 | 第83-84页 |
| 4.2.3 实验方法 | 第84-85页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第85-100页 |
| 4.3.1 单糖组成分析结果 | 第85-86页 |
| 4.3.2 FT-IR光谱分析结果 | 第86-87页 |
| 4.3.3 PSG-2的甲基化分析结果 | 第87-89页 |
| 4.3.4 PSG-2的部分酸水解分析结果 | 第89-90页 |
| 4.3.5 1D和2D NMR分析结果 | 第90-98页 |
| 4.3.6 PSG-2的分子质量及其分布 | 第98-100页 |
| 4.4 本章小结 | 第100-101页 |
| 第5章 黑灵芝水溶性活性多糖的溶液构象特征 | 第101-120页 |
| 5.1 引言 | 第101-103页 |
| 5.2 实验部分 | 第103-105页 |
| 5.2.1 材料与试剂 | 第103页 |
| 5.2.2 仪器设备 | 第103页 |
| 5.2.3 实验方法 | 第103-105页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第105-119页 |
| 5.3.1 黑灵芝水溶性活性多糖在不同溶液中分子排阻色谱行为 | 第105-107页 |
| 5.3.2 黑灵芝水溶性活性多糖的粒径分布和Rh | 第107-108页 |
| 5.3.3 黑灵芝水溶性活性多糖的DN/DC值测定 | 第108-109页 |
| 5.3.4 Zimm-plot分析黑灵芝水溶性活性多糖的Mw和Rg | 第109-111页 |
| 5.3.5 HPSEC-MALLS分析黑灵芝水溶性活性多糖的分子参数 | 第111-112页 |
| 5.3.6 黑灵芝水溶性活性多糖的特性粘度[η]测定 | 第112-113页 |
| 5.3.7 黑灵芝水溶性活性多糖溶液构象分析 | 第113-116页 |
| 5.3.8 黑灵芝水溶性活性多糖AFM分析 | 第116-118页 |
| 5.3.9 SEM和TEM观察黑灵芝水溶性活性多糖的超分子结构 | 第118-119页 |
| 5.4 本章小结 | 第119-120页 |
| 第6章 黑灵芝水溶性多糖的高效分离技术 | 第120-142页 |
| 6.1 引言 | 第120-121页 |
| 6.2 实验部分 | 第121-125页 |
| 6.2.1 材料与试剂 | 第121页 |
| 6.2.2 仪器设备 | 第121-122页 |
| 6.2.3 实验方法 | 第122-125页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第125-141页 |
| 6.3.1 黑灵芝水溶性多糖阴离子交换色谱分级结果 | 第125-127页 |
| 6.3.2 黑灵芝水溶性多糖不同级分的化学成分 | 第127页 |
| 6.3.3 黑灵芝水溶性多糖不同级分的HPSEC分析 | 第127-129页 |
| 6.3.4 黑灵芝水溶性多糖不同级分的单糖组成 | 第129-130页 |
| 6.3.5 黑灵芝水溶性多糖酚类萃取物的HPLC图谱 | 第130-132页 |
| 6.3.6 黑灵芝水溶性多糖不同级分的甲基化分析 | 第132-133页 |
| 6.3.7 黑灵芝水溶性多糖Fw和F_(0.2)级分的~(13)C NMR分析 | 第133-135页 |
| 6.3.8 黑灵芝水溶性多糖体外抗氧化活性级分的筛选 | 第135-137页 |
| 6.3.9 黑灵芝水溶性多糖的巨噬细胞免疫活性级分筛选 | 第137-138页 |
| 6.3.10 黑灵芝水溶性多糖生物功能与化学结构之间的关系 | 第138-141页 |
| 6.4 本章小结 | 第141-142页 |
| 第7章 黑灵芝水不溶性多糖的结构表征与硫酸化修饰 | 第142-163页 |
| 7.1 引言 | 第142-143页 |
| 7.2 实验部分 | 第143-147页 |
| 7.2.1 材料与试剂 | 第143页 |
| 7.2.2 仪器设备 | 第143-144页 |
| 7.2.3 实验方法 | 第144-147页 |
| 7.3 结果与讨论 | 第147-162页 |
| 7.3.1 黑灵芝水不溶性多糖的均一性分析 | 第147-148页 |
| 7.3.2 AGAP和其部分酸水解产物的单糖组成及其连接方式 | 第148-149页 |
| 7.3.3 AGAP的NMR分析 | 第149-152页 |
| 7.3.4 AGAP的分子质量大小 | 第152-153页 |
| 7.3.5 AGAP的硫酸化修饰及其衍生物的理化性质 | 第153-156页 |
| 7.3.6 高活性硫酸化衍生物的筛选 | 第156-159页 |
| 7.3.7 高活性硫酸化衍生物的结构特征 | 第159-162页 |
| 7.4 本章小结 | 第162-163页 |
| 第8章 结论和展望 | 第163-167页 |
| 8.1 结论 | 第163-165页 |
| 8.2 展望 | 第165-167页 |
| 致谢 | 第167-169页 |
| 参考文献 | 第169-186页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第186-187页 |
