| 摘要 | 第7-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 引言 | 第10-11页 |
| 上篇 文献综述 | 第11-32页 |
| 1 栗疫病菌的危害和生物防治的研究进展 | 第12-13页 |
| 2 营养体不亲和性 | 第13页 |
| 3 细胞程序性死亡(PCD) | 第13-14页 |
| 4 栗疫病中DsRNA病毒的发现和传播方式 | 第14-15页 |
| 5 营养体不亲和性、病毒传播和PCD之间的关系 | 第15页 |
| 6 BCL-2家族蛋白 | 第15-18页 |
| 6.1 Bcl-2的历史 | 第15-16页 |
| 6.2 Bcl-2蛋白家族的结构 | 第16-17页 |
| 6.3 Bcl-2功能的探索与作用形式 | 第17-18页 |
| 7 细胞凋亡 | 第18-23页 |
| 7.1 细胞凋亡的认知 | 第18-19页 |
| 7.2 凋亡途径 | 第19-21页 |
| 7.3 细胞凋亡的“始作俑者” | 第21-22页 |
| 7.4 细胞凋亡的特征与检测 | 第22-23页 |
| 8 线粒体对细胞凋亡的“警卫工作” | 第23-24页 |
| 9 细胞凋亡对栗疫病菌的生物防治的意义 | 第24-26页 |
| 参考文献 | 第26-32页 |
| 下篇 研究内容 | 第32-72页 |
| 第一章 BCL-2基因对栗疫病菌致病力和病毒传播的影响研究 | 第34-52页 |
| 1 材料与方法 | 第36-41页 |
| 1.1 供试菌株及培养条件 | 第36页 |
| 1.2 栗疫病菌DNA、RNA提取和cDNA合成 | 第36-38页 |
| 1.3 C.parasitica原生质体转化 | 第38-39页 |
| 1.4 转化子Bcl-2表达水平的验证 | 第39-40页 |
| 1.5 毒力菌株和转化子致病力的测定 | 第40-41页 |
| 2 结果与分析 | 第41-47页 |
| 2.1 Bcl-2转化子的Southern Blot验证和表达量分析 | 第41-42页 |
| 2.2 Bcl-2转化子致病力的测定 | 第42-44页 |
| 2.3 Bcl-2转化子病毒传播率的测定 | 第44-47页 |
| 3 讨论 | 第47-49页 |
| 参考文献 | 第49-52页 |
| 第二章 过表达BCL-2基因对栗疫病菌表型和抗凋亡的影响研究 | 第52-72页 |
| 1 材料与方法 | 第53-56页 |
| 1.1 供试菌株及培养条件 | 第53-54页 |
| 1.2 毒力菌株和转化子的表型分析 | 第54页 |
| 1.2.1 产孢量的测定 | 第54页 |
| 1.2.2 生物量的测定 | 第54页 |
| 1.2.3 生长速率的测定 | 第54页 |
| 1.2.4 菌丝形态的观察 | 第54页 |
| 1.3 转化子胞外酶活性的测定 | 第54-55页 |
| 1.3.1 转化子孢外酶活性的测定 | 第54-55页 |
| 1.3.1.1 转化子漆酶活性测定 | 第55页 |
| 1.3.1.2 多聚半乳糖甘酸酶活性测定 | 第55页 |
| 1.4 ROS和NO含量的测定 | 第55页 |
| 1.5 DNA Ladder的初步探索和核凋亡检测 | 第55-56页 |
| 2 结果与分析 | 第56-68页 |
| 2.1 产孢量和生物量的测定 | 第56-58页 |
| 2.2 过氧化氢胁迫下生长速率的测定 | 第58页 |
| 2.3 盐胁迫下生长速率的测定 | 第58-60页 |
| 2.4 BB-1-5与转化子菌丝形态的观察 | 第60页 |
| 2.5 孢外酶活性的测定 | 第60-64页 |
| 2.5.1 转化子漆酶活性测定 | 第60-63页 |
| 2.5.2 多聚半乳糖核苷酸酶活性的检测 | 第63-64页 |
| 2.6 ROS含量的测定 | 第64-65页 |
| 2.7 NO含量的测定 | 第65页 |
| 2.8 核凋亡的测定 | 第65-68页 |
| 3 讨论 | 第68-70页 |
| 参考文献 | 第70-72页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第72-74页 |
| 致谢 | 第74页 |
