| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 英文缩略词表 | 第12-13页 |
| 第1章 绪论 | 第13-17页 |
| 1.1 乳腺癌及其治疗现状 | 第13页 |
| 1.2 光动力疗法( Photodynamic Therapy,PDT) | 第13-15页 |
| 1.2.1 光动力疗法发展 | 第13-14页 |
| 1.2.2 肿瘤缺氧影响PDT的治疗效果 | 第14页 |
| 1.2.3 缺氧环境改善 | 第14-15页 |
| 1.2.4 光敏剂HPPH简介 | 第15页 |
| 1.3 超声-载药微泡简介 | 第15-17页 |
| 第2章 研究论文的立题依据、内容和目的意义 | 第17-19页 |
| 第3章 OxyMBs-HPPH的制备及其理化性质的研究 | 第19-31页 |
| 3.1 试剂和仪器 | 第19页 |
| 3.1.1 主要试剂 | 第19页 |
| 3.1.2 仪器 | 第19页 |
| 3.2 主要试剂配制 | 第19-20页 |
| 3.3 实验方法 | 第20-22页 |
| 3.3.1 不同氧气和全氟丙烷比例的HPPH微泡的制备 | 第20-21页 |
| 3.3.2 不同氧气和全氟丙烷比例的HPPH微泡稳定性研究 | 第21页 |
| 3.3.3 紫外分光光度计法测定不同HPPH投药量时OxyMBs-HPPH的包封率 | 第21页 |
| 3.3.4 OxyMBs-HPPH中HPPH光谱的测定 | 第21-22页 |
| 3.3.5 OxyMBs-HPPH光稳定性的测定 | 第22页 |
| 3.3.6 OxyMBs-HPPH单线态氧产率的测定 | 第22页 |
| 3.3.7 数据处理 | 第22页 |
| 3.4 实验结果 | 第22-27页 |
| 3.4.1 各组微泡浓度随时间变化的情况 | 第22-23页 |
| 3.4.2 各组微泡形态随时间变化的变化 | 第23-24页 |
| 3.4.3 各组微泡粒径随时间变化的变化 | 第24页 |
| 3.4.4 不同投药量时OxyMBs-HPPH包封率的测定 | 第24页 |
| 3.4.5 OxyMBs-HPPH光谱特性分析 | 第24-26页 |
| 3.4.6 OxyMBs-HPPH的光稳定性 | 第26-27页 |
| 3.4.7 OxyMBs-HPPH的单线态氧产率的测定 | 第27页 |
| 3.5 讨论 | 第27-31页 |
| 第4章 缺氧细胞模型的建立及最佳光照时间的筛选 | 第31-43页 |
| 4.1 实验材料和仪器 | 第31-34页 |
| 4.1.1 细胞来源和细胞培养 | 第31页 |
| 4.1.2 实验主要仪器 | 第31-32页 |
| 4.1.3 超声装置 | 第32页 |
| 4.1.4 实验试剂 | 第32-34页 |
| 4.2 实验方法 | 第34-38页 |
| 4.2.1 细胞的复苏、培养、传代及冻存 | 第34-35页 |
| 4.2.2 缺氧体系的建立 | 第35-37页 |
| 4.2.3 流式细胞仪检测筛选合适的处理时间 | 第37页 |
| 4.2.4 数据处理 | 第37-38页 |
| 4.3 实验结果 | 第38-40页 |
| 4.3.1 MTT法筛选合适Na_2S_2O_4处理浓度 | 第38页 |
| 4.3.2 蛋白质免疫印迹检测HIF-1α的表达 | 第38-39页 |
| 4.3.3 流式细胞仪检测筛选最佳处理时间 | 第39-40页 |
| 4.4 讨论 | 第40-43页 |
| 第5章 超声联合OxyMBs-HPPH介导的PDT对两种乳腺癌细胞生长抑制以及凋亡的研究 | 第43-59页 |
| 5.1 实验材料和仪器 | 第43-44页 |
| 5.1.1 细胞来源和细胞培养 | 第43页 |
| 5.1.2 实验仪器 | 第43页 |
| 5.1.3 主要试剂及配置 | 第43-44页 |
| 5.1.4 光照装置 | 第44页 |
| 5.2 实验方法 | 第44-51页 |
| 5.2.1 MTT法检测OxyMBs-HPPH对细胞的暗毒性 | 第44-45页 |
| 5.2.2 MTT法检测超声联合OxyMBs-HPPH介导的PDT对细胞生长的抑制作用 | 第45-47页 |
| 5.2.3 PI染色检测超声联合OxyMBs-HPPH介导的PDT对细胞膜的损伤 | 第47页 |
| 5.2.4 扫描电镜观察超声联合OxyMBs-HPPH介导的PDT对细胞形态损伤情况 | 第47-49页 |
| 5.2.5 超声联合OxyMBs-HPPH介导的PDT对细胞凋亡的影响 | 第49页 |
| 5.2.6 Hoechst3342染色检测超声联合OxyMBs-HPPH介导的PDT对细胞核的影响 | 第49-50页 |
| 5.2.7 DCFH-DA法检测超声联合OxyMBs-HPPH介导的PDT对细胞内ROS产量的影响 | 第50-51页 |
| 5.2.8 罗丹明123染色检测超声联合OxyMBs-HPPH介导的PDT对细胞线粒体膜电位的变化 | 第51页 |
| 5.3 数据分析 | 第51-52页 |
| 5.4 实验结果 | 第52-57页 |
| 5.4.1 MTT法检测OxyMBs-HPPH对细胞的暗毒性 | 第52页 |
| 5.4.2 MTT法检测超声联合OxyMBs-HPPH介导的光动力疗法对细胞存活的影响 | 第52-53页 |
| 5.4.3 超声联合OxyMBs-HPPH介导的PDT对细胞膜以及细胞形态损伤的检测 | 第53-54页 |
| 5.4.4 超声联合OxyMBs-HPPH介导的PDT对细胞凋亡的影响 | 第54-55页 |
| 5.4.5 超声联合OxyMBs-HPPH介导的PDT对细胞核的影响 | 第55页 |
| 5.4.6 超声联合OxyMBs-HPPH介导的PDT对细胞内活性氧的产生和线粒体膜电位的变化的影响 | 第55-57页 |
| 5.5 讨论 | 第57-59页 |
| 第6章 超声联合OxyMBs-HPPH介导的PDT在体抗肿瘤实验研究 | 第59-67页 |
| 6.1 材料和仪器 | 第59-60页 |
| 6.1.1 实验动物及瘤株 | 第59页 |
| 6.1.2 主要试剂 | 第59页 |
| 6.1.3 主要仪器 | 第59-60页 |
| 6.1.4 装置 | 第60页 |
| 6.2 实验方法 | 第60-62页 |
| 6.2.1 动物模型的建立、实验分组及处理过程 | 第60-61页 |
| 6.2.2 实验取材及指标检测 | 第61页 |
| 6.2.3 肿瘤组织形态学和各个脏器形态学观察并称重 | 第61-62页 |
| 6.2.4 数据分析 | 第62页 |
| 6.3 实验结果 | 第62-66页 |
| 6.3.1 超声联合OxyMBs-HPPH介导的PDT对小鼠肿瘤的抑制作用 | 第62-63页 |
| 6.3.2 超声联合OxyMBs-HPPH介导的PDT对小鼠瘤重的影响 | 第63-64页 |
| 6.3.3 超声联合OxyMBs-HPPH介导的PDT对小鼠肿瘤组织的影响 | 第64-65页 |
| 6.3.4 超声联合OxyMBs-HPPH介导的PDT对小鼠肺结节的影响 | 第65页 |
| 6.3.5 超声联合OxyMBs-HPPH介导的PDT对小鼠相对安全性的影响 | 第65-66页 |
| 6.4 讨论 | 第66-67页 |
| 总结和展望 | 第67-69页 |
| 参考文献 | 第69-75页 |
| 致谢 | 第75-77页 |
| 攻读硕士学位期间的研究成果 | 第77页 |
