摘要 | 第3-6页 |
Abstract | 第6-8页 |
缩略词表 | 第9-14页 |
第1章 绪论 | 第14-20页 |
1.1 光动力疗法(Photodynamic Therapy,PDT) | 第14-16页 |
1.1.1 光动力疗法简介 | 第14页 |
1.1.2 PDT治疗原理 | 第14-15页 |
1.1.3 PDT在乳腺癌中的应用 | 第15-16页 |
1.2 光敏剂 | 第16-20页 |
1.2.1 理想光敏剂所具备的条件 | 第16-17页 |
1.2.2 光敏剂的发展及临床应用的缺陷 | 第17页 |
1.2.3 新型光敏剂左卟吩钠(S-PS) | 第17-20页 |
第2章 论文的立论依据、内容和目的意义 | 第20-22页 |
第3章 S-PS的理化属性分析 | 第22-28页 |
3.1 实验仪器和材料 | 第22-23页 |
3.1.1 实验用仪器 | 第22页 |
3.1.2 光照装置 | 第22页 |
3.1.3 试剂与配置 | 第22-23页 |
3.2 实验方法 | 第23-24页 |
3.2.1 S-PS的紫外-可见吸收光谱和荧光光谱分析 | 第23页 |
3.2.2 S-PS光稳定性分析 | 第23页 |
3.2.3 单线态氧产量检测 | 第23-24页 |
3.2.4 实验数据分析 | 第24页 |
3.3 实验结果与讨论 | 第24-28页 |
3.3.1 S-PS的紫外-可见吸收光谱和荧光光谱分析 | 第24-25页 |
3.3.2 S-PS光稳定性分析 | 第25-26页 |
3.3.3 单线态氧产量检测 | 第26页 |
3.3.4 讨论 | 第26-28页 |
第4章 S-PS-PDT对乳腺癌细胞的杀伤效应研究 | 第28-40页 |
4.1 实验细胞、仪器和试剂 | 第28-29页 |
4.1.1 细胞来源与培养 | 第28页 |
4.1.2 实验用仪器 | 第28页 |
4.1.3 光照装置 | 第28页 |
4.1.4 试剂与配置 | 第28-29页 |
4.2 实验方法 | 第29-33页 |
4.2.1 S-PS在MDA-MB-231和4T1细胞中的富集特性 | 第29-30页 |
4.2.2 MTT法分析S-PS对乳腺癌细胞的暗毒性 | 第30页 |
4.2.3 MTT法分析S-PS-PDT对乳腺癌细胞的增殖抑制作用 | 第30-31页 |
4.2.4 流式细胞仪结合Annexin V-FITC /PI分析乳腺癌细胞凋亡情况 | 第31页 |
4.2.5 激光共聚焦显微镜观察S-PS的亚细胞定位 | 第31-32页 |
4.2.6 DCFH-DA法检测乳腺癌细胞内活性氧变化 | 第32页 |
4.2.7 PI检测乳腺癌细胞膜通透性 | 第32页 |
4.2.8 DNA损伤检测 | 第32-33页 |
4.2.9 实验数据分析 | 第33页 |
4.3 实验结果与讨论 | 第33-40页 |
4.3.1 S-PS在乳腺癌细胞中的富集特性 | 第33页 |
4.3.2 MTT法检测S-PS对乳腺癌细胞的暗毒性 | 第33-34页 |
4.3.3 MTT法分析S-PS-PDT对乳腺癌细胞的增殖抑制作用 | 第34-35页 |
4.3.4 流式细胞仪结合Annexin V/PI检测乳腺癌细胞凋亡 | 第35页 |
4.3.5 激光共聚焦显微镜观察S-PS的亚细胞定位 | 第35-36页 |
4.3.6 DCFH-DA法检测乳腺癌细胞内活性氧变化 | 第36页 |
4.3.7 PI检测乳腺癌细胞膜通透性 | 第36-37页 |
4.3.8 DNA损伤检测 | 第37-38页 |
4.3.9 讨论 | 第38-40页 |
第5章 S-PS-PDT对BSA损伤效应研究 | 第40-46页 |
5.1 实验材料和仪器 | 第40页 |
5.1.1 主要仪器 | 第40页 |
5.1.2 主要试剂及配制 | 第40页 |
5.2 实验方法 | 第40-41页 |
5.2.1 BSA与不同浓度的S-PS作用后紫外-可见吸收光谱和荧光光谱变化 | 第40-41页 |
5.2.2 S-PS-PDT处理BSA后紫外-可见吸收光谱和荧光光谱变化 | 第41页 |
5.2.3 数据分析 | 第41页 |
5.3 实验结果与讨论 | 第41-46页 |
5.3.1 不同处理条件下BSA溶液与S-PS的紫外-可见吸收光谱的变化 | 第41-42页 |
5.3.2 不同处理条件下BSA的荧光光谱变化 | 第42-43页 |
5.3.3 不同处理条件下BSA的同步荧光光谱变化 | 第43-44页 |
5.3.4 讨论 | 第44-46页 |
第6章 S-PS在4T1荷瘤小鼠体内的代谢研究 | 第46-52页 |
6.1 实验细胞、动物和仪器 | 第46页 |
6.1.1 实验瘤株及动物 | 第46页 |
6.1.2 主要仪器 | 第46页 |
6.2 实验方法 | 第46-47页 |
6.2.1 4T1荷瘤小鼠模型的建立及实验分组 | 第46页 |
6.2.2 S-PS标准曲线绘制 | 第46-47页 |
6.2.3 S-PS在4T1移植瘤小鼠血浆和各组织中的代谢变化 | 第47页 |
6.2.4 数据分析 | 第47页 |
6.3 实验结果与讨论 | 第47-52页 |
6.3.1 S-PS标准曲线绘制 | 第47-48页 |
6.3.2 S-PS在4T1移植瘤小鼠血浆和各组织中的分布及变化 | 第48-49页 |
6.3.3 S-PS在4T1移植瘤小鼠肿瘤组织中的分布及变化 | 第49-50页 |
6.3.4 讨论 | 第50-52页 |
第7章 S-PS-PDT对4T1移植瘤的杀伤作用探究 | 第52-60页 |
7.1 实验材料和仪器 | 第52-53页 |
7.1.1 实验动物及瘤株 | 第52页 |
7.1.2 实验用仪器 | 第52页 |
7.1.3 光照装置 | 第52页 |
7.1.4 实验用试剂 | 第52-53页 |
7.2 试验方法 | 第53-55页 |
7.2.1 动物模型的建立 | 第53页 |
7.2.2 实验分组及处理 | 第53页 |
7.2.3 实验取材及指标检测 | 第53-54页 |
7.2.4 石蜡切片制作过程 | 第54-55页 |
7.2.5 HE染色 | 第55页 |
7.2.6 数据分析 | 第55页 |
7.3 实验结果与讨论 | 第55-60页 |
7.3.1 S-PS-PDT对小鼠肿瘤生长的影响 | 第55-57页 |
7.3.2 S-PS-PDT杀伤4T1肿瘤组织的显微结构观察 | 第57页 |
7.3.3 S-PS-PDT对4T1荷瘤小鼠存活期影响 | 第57-58页 |
7.3.4 安全性评估 | 第58-59页 |
7.3.5 讨论 | 第59-60页 |
第8章 总结 | 第60-62页 |
参考文献 | 第62-70页 |
致谢 | 第70-72页 |
攻读硕士学位期间的研究成果 | 第72页 |