| 第一章 绪论 | 第8-21页 |
| 1.1 引言 | 第8页 |
| 1.2 葡萄糖生物传感器的发展 | 第8-12页 |
| 1.2.1 第一代葡萄糖生物传感器 | 第9-10页 |
| 1.2.2 第二代葡萄糖生物传感器 | 第10-11页 |
| 1.2.3 体外葡萄糖测试 | 第11-12页 |
| 1.2.4 体内葡萄糖监测 | 第12页 |
| 1.3 自组装膜技术在电化学酶传感器中的应用 | 第12-15页 |
| 1.3.1 自组装膜技术固定酶 | 第12-13页 |
| 1.3.2 自组装膜技术在生物传感器中的应用 | 第13-15页 |
| 1.4 溶胶－凝胶法 | 第15-20页 |
| 1.4.1 溶胶－凝胶的定义 | 第16-17页 |
| 1.4.2 溶胶－凝胶过程的基本原理 | 第17-18页 |
| 1.4.3 溶胶－凝胶法应用于生物传感器领域的优点 | 第18-20页 |
| 研究课题的提出 | 第20-21页 |
| 第二章 静电自组装技术膜制备 Cs/GOx 生物传感器的研究 | 第21-33页 |
| 2.1 引言 | 第21-22页 |
| 2.2 实验部分 | 第22-24页 |
| 2.2.1 实验试剂与仪器 | 第22-23页 |
| 2.2.2 酶电极的制备 | 第23-24页 |
| 2.2.3 测试系统 | 第24页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第24-32页 |
| 2.3.1 扫描速率对酶电极的影响 | 第24-25页 |
| 2.3.2 测试电压的确定 | 第25-26页 |
| 2.3.3 测试条件的选择 | 第26-29页 |
| 2.3.4 酶电极电化学性能测试 | 第29-32页 |
| 2.3.5 酶电极的稳定性 | 第32页 |
| 2.4 本章结论 | 第32-33页 |
| 第三章 壳聚糖接枝聚苯胺/葡萄糖氧化酶分子自组装制备生物传感器的研究 | 第33-47页 |
| 3.1 引言 | 第33-34页 |
| 3.2 实验部分 | 第34-36页 |
| 3.2.1 实验试剂与仪器 | 第34-35页 |
| 3.2.2 壳聚糖接枝聚苯胺的制备 | 第35页 |
| 3.2.3 酶电极的制备 | 第35页 |
| 3.2.4 测试系统 | 第35-36页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第36-46页 |
| 3.3.1 壳聚糖接枝聚苯胺反应机理及产物表征 | 第36-37页 |
| 3.3.2 扫描速率对酶电极的影响 | 第37-38页 |
| 3.3.3 测试电压的确定 | 第38-39页 |
| 3.3.4 测试条件的选择 | 第39-42页 |
| 3.3.5 酶电极电化学性能测试 | 第42-45页 |
| 3.3.6 酶电极的稳定性 | 第45-46页 |
| 3.4 本章结论 | 第46-47页 |
| 第四章 PEM/Sol-Gel 复合膜修饰葡萄糖生物传感器的研究 | 第47-59页 |
| 4.1 引言 | 第47页 |
| 4.2 试验部分 | 第47-50页 |
| 4.2.1 实验试剂与仪器 | 第47-48页 |
| 4.2.2 聚电解质多层累积膜修饰电极的制备 | 第48-49页 |
| 4.2.3 Sol-Gel 溶液和酶溶液的配制 | 第49页 |
| 4.2.4 酶电极的制备 | 第49页 |
| 4.2.5 测试系统 | 第49-50页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第50-58页 |
| 4.3.1 Sol-Gel 前驱体的选择 | 第50页 |
| 4.3.2 酶电极的选择透过性 | 第50-52页 |
| 4.3.3 扫描速率对酶电极的影响 | 第52页 |
| 4.3.4 测试电压的确定 | 第52-53页 |
| 4.3.5 测试条件的选择 | 第53-56页 |
| 4.3.6 酶电极电化学性能测试 | 第56-57页 |
| 4.3.7 酶电极的稳定性 | 第57-58页 |
| 4.4 本章结论 | 第58-59页 |
| 全文结论 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-65页 |
| 攻读硕士期间发表的论文情况 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66页 |
