| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第11-19页 |
| 1.1 前言 | 第11页 |
| 1.2 木质素的组成和结构 | 第11-13页 |
| 1.3 降解木质素的微生物 | 第13-14页 |
| 1.4 木质素的生物降解机制 | 第14-16页 |
| 1.4.1 木质素生物降解酶系 | 第14-16页 |
| 1.4.2 木质纤维素的生物降解机制 | 第16页 |
| 1.5 微生物混合培养及复合菌系分解木质纤维素 | 第16-17页 |
| 1.6 高通量测序技术在研究微生物群落组成结构中的应用 | 第17-19页 |
| 第二章 复合菌系LDC细菌组成多样性分析 | 第19-31页 |
| 2.1 材料与方法 | 第19-22页 |
| 2.1.1 菌种 | 第19页 |
| 2.1.2 培养基 | 第19-20页 |
| 2.1.3 复合菌系LDC可培养菌株的分离鉴定 | 第20-21页 |
| 2.1.4 纯培养菌株的木质素降解能力的测定 | 第21页 |
| 2.1.5 高通量测序 | 第21-22页 |
| 2.2 结果与分析 | 第22-29页 |
| 2.2.1 LDC中纯培养菌株的分离 | 第22页 |
| 2.2.2 LDC中纯培养菌株的鉴定 | 第22-24页 |
| 2.2.3 各单菌株木质素降解能力的测定 | 第24-26页 |
| 2.2.4 LDC细菌组成多样性分析 | 第26-29页 |
| 2.3 小结 | 第29-31页 |
| 第三章 初始培养条件对复合菌系LDC降解特性的影响 | 第31-43页 |
| 3.1 材料与方法 | 第31-33页 |
| 3.1.1 试验方案 | 第31-32页 |
| 3.1.2 试验方法 | 第32-33页 |
| 3.2 结果与分析 | 第33-41页 |
| 3.2.1 接种量对LDC的木质素降解率的影响 | 第33页 |
| 3.2.2 底物体积比对LDC的木质素降解率的影响 | 第33-34页 |
| 3.2.3 碱性木质素浓度对LDC的木质素降解率的影响 | 第34-37页 |
| 3.2.4 NaCl浓度对LDC的木质素降解率的影响 | 第37-38页 |
| 3.2.5 LDC对芦苇、水稻、玉米秸秆中木质素的降解 | 第38-41页 |
| 3.3 小结 | 第41-43页 |
| 第四章 复合菌系LDC的酶活特性 | 第43-53页 |
| 4.1 材料与方法 | 第43-45页 |
| 4.1.1 试验方案 | 第43-44页 |
| 4.1.2 试验方法 | 第44-45页 |
| 4.2 结果与分析 | 第45-51页 |
| 4.2.1 LDC分解过程中酶活性的变化规律 | 第45-46页 |
| 4.2.2 培养基装液量对酶活性的影响 | 第46-47页 |
| 4.2.3 培养温度对酶活性的影响 | 第47-48页 |
| 4.2.4 初始pH对酶活性的影响 | 第48页 |
| 4.2.5 Cu~(2+)浓度对酶活性的影响 | 第48-49页 |
| 4.2.6 氮源种类对酶活性的影响 | 第49-50页 |
| 4.2.7 复合碳源种类对酶活性的影响 | 第50页 |
| 4.2.8 最优条件酶活性 | 第50-51页 |
| 4.3 小结 | 第51-53页 |
| 第五章 复合菌系LDC的降解过程及降解产物分析 | 第53-59页 |
| 5.1 材料与方法 | 第53-54页 |
| 5.1.1 菌种 | 第53页 |
| 5.1.2 扫描电镜样品制备 | 第53页 |
| 5.1.3 气质联用样品制备 | 第53-54页 |
| 5.2 结果与分析 | 第54-58页 |
| 5.2.1 秸秆降解的微观过程 | 第54-56页 |
| 5.2.2 秸秆的降解产物 | 第56-58页 |
| 5.3 小结 | 第58-59页 |
| 第六章 讨论与结论 | 第59-63页 |
| 6.1 讨论 | 第59-61页 |
| 6.1.1 木质素分解复合菌系LDC的降解特性及酶活特性 | 第59-60页 |
| 6.1.2 复合菌系LDC的细菌组成多样性 | 第60-61页 |
| 6.1.3 复合菌系LDC降解秸秆的微观过程 | 第61页 |
| 6.2 结论 | 第61-63页 |
| 参考文献 | 第63-71页 |
| 致谢 | 第71-73页 |
| 个人简历 | 第73页 |
