| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 第一章 ：绪论 | 第12-32页 |
| 1.1 活体成像 | 第12-14页 |
| 1.1.1 小动物活体成像技术 | 第12页 |
| 1.1.2 可见光活体成像技术 | 第12-14页 |
| 1.2 荧光探针 | 第14-25页 |
| 1.2.1 有机荧光染料 | 第14-16页 |
| 1.2.2 量子点 | 第16-19页 |
| 1.2.3 碳量子点 | 第19页 |
| 1.2.4 上转换发光材料 | 第19-22页 |
| 1.2.5 其他无机纳米荧光探针 | 第22-23页 |
| 1.2.6 荧光蛋白 | 第23-25页 |
| 1.3. 纳米二氧化硅载体 | 第25-31页 |
| 1.3.1. 反相微乳液制备法 | 第27-30页 |
| 1.3.2. St ber 水解法 | 第30-31页 |
| 1.4 本论文研究的目的、意义和内容 | 第31-32页 |
| 第二章 红外荧光蛋白的构建 | 第32-43页 |
| 2.1 引言 | 第32页 |
| 2.2 实验材料与方法 | 第32-36页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第32-33页 |
| 2.2.2 材料与试剂 | 第33页 |
| 2.2.3 实验仪器 | 第33-34页 |
| 2.2.4 微生物培养基和药品配制 | 第34-36页 |
| 2.3 实验方法 | 第36-42页 |
| 2.3.1 DNA 的琼脂糖凝胶电泳 | 第36-37页 |
| 2.3.2 PCR 产物纯化 | 第37页 |
| 2.3.3 连接和转化 | 第37页 |
| 2.3.4 克隆测定与测序 | 第37页 |
| 2.3.5 菌种保藏 | 第37-38页 |
| 2.3.6 酶切反应 | 第38页 |
| 2.3.7 红色荧光蛋白的表达获取 | 第38-42页 |
| 2.3.7.1 纯化原理 | 第38-39页 |
| 2.3.7.2 实验仪器和试剂 | 第39-40页 |
| 2.3.7.3 实验步骤 | 第40-41页 |
| 2.3.7.4 纯化后的红外荧光蛋白鉴定 | 第41-42页 |
| 2.4 实验结果 | 第42-43页 |
| 2.4.1 PCR 反应结果 | 第42页 |
| 2.4.2 蛋白电泳结果 | 第42-43页 |
| 第三章 纳米二氧化硅包裹单个近红外荧光蛋白作为荧光探针 | 第43-57页 |
| 3.1 引言 | 第43-44页 |
| 3.2 实验部分 | 第44-46页 |
| 3.2.1 纳米二氧化硅的制备方法 | 第44页 |
| 3.2.2 Lysine-catalyzed St ber method 制备纳米二氧化硅荧光探针 | 第44-45页 |
| 3.2.3 研究思路 | 第45-46页 |
| 3.3 结果表征与分析 | 第46-57页 |
| 3.3.1 本章实验试剂、仪器一览 | 第46-47页 |
| 3.3.2 HiTrap Q HP-1ml 离子交换柱实验 | 第47页 |
| 3.3.3 粒径与分散性表征 | 第47-51页 |
| 3.3.4 荧光探针稳定性表征 | 第51-54页 |
| 3.3.5 荧光探针光学性能表征 | 第54-57页 |
| 第四章 细胞及其动物实验 | 第57-67页 |
| 4.1 细胞试验 | 第57-59页 |
| 4.2 动物活体成像实验 | 第59-62页 |
| 4.3 动物体外实验 | 第62-67页 |
| 第五章 总结和展望 | 第67-69页 |
| 研究总结 | 第67-68页 |
| 研究展望 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-78页 |
| 作者攻读硕士学位期间科研成果及获得奖项 | 第78-79页 |
| 致谢 | 第79-80页 |
