摘要 | 第3-7页 |
ABSTRACT | 第7-11页 |
英文缩略语 | 第12-21页 |
第1章 引言 | 第21-55页 |
1.1 多糖分离纯化、结构表征及溶液构象研究进展 | 第21-32页 |
1.1.1 多糖的分离 | 第22页 |
1.1.2 多糖的纯化 | 第22-24页 |
1.1.3 多糖的结构表征 | 第24-29页 |
1.1.4 多糖溶液构象表征 | 第29-32页 |
1.1.5 多糖研究中存在的问题 | 第32页 |
1.2 车前子研究进展 | 第32-43页 |
1.2.1 车前子中非多糖类化学成分研究概况 | 第33-34页 |
1.2.2 车前子多糖研究进展 | 第34-43页 |
1.2.3 车前子多糖研究存在的问题及展望 | 第43页 |
1.3 本文研究的主要内容、创新点和科学意义 | 第43-44页 |
1.3.1 主要研究内容及意义 | 第43-44页 |
1.3.2 本研究的创新性 | 第44页 |
参考文献 | 第44-55页 |
第2章 大粒车前子多糖功能活性评价 | 第55-62页 |
2.1 引言 | 第55页 |
2.2 实验部分 | 第55-58页 |
2.2.1 实验材料 | 第55-56页 |
2.2.2 仪器与设备 | 第56页 |
2.2.3 实验方法 | 第56-58页 |
2.3 结果与讨论 | 第58-61页 |
2.3.1 车前子多糖对小肠蠕动抑制模型小鼠的影响 | 第58-59页 |
2.3.2 车前子多糖对燥结型便秘模型小鼠的影响 | 第59页 |
2.3.3 车前子多糖对实热型便秘模型小鼠的影响 | 第59-60页 |
2.3.4 车前子多糖对脾胃虚寒型便秘模型小鼠的作用 | 第60页 |
2.3.5 车前子多糖对寒结型便秘模型小鼠模型的作用 | 第60-61页 |
本章小结 | 第61页 |
参考文献 | 第61-62页 |
第3章 大粒车前子多糖分离纯化及其理化性质测定 | 第62-73页 |
3.1 前言 | 第62页 |
3.2 实验部分 | 第62-65页 |
3.2.1 实验材料 | 第62页 |
3.2.2 实验设备 | 第62-63页 |
3.2.3 实验方法 | 第63-65页 |
3.3 实验结果 | 第65-70页 |
3.3.1 多糖分离纯化 | 第65-67页 |
3.3.2 基本理化性质测定 | 第67-68页 |
3.3.3 紫外可见光谱分析 | 第68页 |
3.3.4 红外光谱分析 | 第68-70页 |
本章小结 | 第70页 |
参考文献 | 第70-73页 |
第4章 大粒车前子多糖PLP-1结构表征 | 第73-92页 |
4.1 前言 | 第73页 |
4.2 实验部分 | 第73-76页 |
4.2.1 实验材料 | 第73-74页 |
4.2.2 主要仪器与设备 | 第74页 |
4.2.3 实验方法 | 第74-76页 |
4.3 结果与讨论 | 第76-90页 |
4.3.1 单糖和糖醛酸组成分析 | 第76-78页 |
4.3.2 甲基化分析 | 第78-80页 |
4.3.3 部分酸水解 | 第80-82页 |
4.3.4 NMR分析 | 第82-90页 |
本章小结 | 第90页 |
参考文献 | 第90-92页 |
第5章 大粒车前子多糖PLP-2结构表征 | 第92-113页 |
5.1 前言 | 第92页 |
5.2 材料和方法 | 第92-94页 |
5.2.1 实验材料 | 第92页 |
5.2.2 主要仪器与设备 | 第92-93页 |
5.2.3 实验方法 | 第93-94页 |
5.3 结果和讨论 | 第94-110页 |
5.3.1 单糖和糖醛酸组成分析 | 第94页 |
5.3.2 甲基化分析 | 第94-97页 |
5.3.3 部分酸水解 | 第97-100页 |
5.3.4 草酸解 | 第100-101页 |
5.3.5 NMR分析 | 第101-108页 |
5.3.6 SEM分析 | 第108-110页 |
本章小结 | 第110-111页 |
参考文献 | 第111-113页 |
第6章 大粒车前子多糖PLP-3结构表征 | 第113-129页 |
6.1 前言 | 第113页 |
6.2 实验部分 | 第113-115页 |
6.2.1 实验材料 | 第113页 |
6.2.2 主要仪器与设备 | 第113-114页 |
6.2.3 实验方法 | 第114-115页 |
6.3 结果与讨论 | 第115-127页 |
6.3.1 单糖和糖醛酸组成分析 | 第115页 |
6.3.2 甲基化分析 | 第115-117页 |
6.3.3 部分酸水解 | 第117-120页 |
6.3.4 NMR分析 | 第120-127页 |
本章小结 | 第127页 |
参考文献 | 第127-129页 |
第7章 大粒车前子多糖PLCP流变学研究 | 第129-140页 |
7.1 前言 | 第129页 |
7.2 实验部分 | 第129-131页 |
7.2.1 实验材料 | 第129-130页 |
7.2.2 主要仪器与设备 | 第130页 |
7.2.3 实验方法 | 第130-131页 |
7.3 结果与讨论 | 第131-138页 |
7.3.1 静态流变学测试 | 第131-134页 |
7.3.2 动态流变学测试 | 第134-138页 |
本章小节 | 第138-139页 |
参考文献 | 第139-140页 |
第8章 CA~(2+)对大粒车前子多糖理化性质的影响 | 第140-161页 |
8.1 引言 | 第140页 |
8.2 实验部分 | 第140-143页 |
8.2.1 实验材料 | 第140-141页 |
8.2.2 主要仪器与设备 | 第141页 |
8.2.3 实验方法 | 第141-143页 |
8.3 结果与讨论 | 第143-157页 |
8.3.1 大粒车前子中各组分元素分析 | 第143-144页 |
8.3.2 PLCP脱钙的单因素优化实验 | 第144-145页 |
8.3.3 PLCP-E基本理化指标测定 | 第145页 |
8.3.4 甲基化分析 | 第145-146页 |
8.3.5 流变学分析 | 第146-149页 |
8.3.6 阿魏酸含量测定及对PLCP流变性能的影响 | 第149-153页 |
8.3.7 SEM观察 | 第153页 |
8.3.8 TG-DTA分析 | 第153-154页 |
8.3.9 Ca~(2+)和车前子多糖链之间的可能相互作用关系机制推测 | 第154-157页 |
本章小结 | 第157-158页 |
参考文献 | 第158-161页 |
第9章 CA~(2+)对大粒车前子多糖溶液构象的影响 | 第161-172页 |
9.1 引言 | 第161页 |
9.2 实验部分 | 第161-163页 |
9.2.1 实验材料 | 第161页 |
9.2.2 主要仪器与设备 | 第161-162页 |
9.2.3 实验方法 | 第162-163页 |
9.3 结果与讨论 | 第163-170页 |
9.3.1 特性粘度 | 第163-164页 |
9.3.2 动态激光光散射 | 第164-166页 |
9.3.3 静态激光光散射 | 第166-167页 |
9.3.4 HPSEC | 第167-170页 |
9.4 本章小结 | 第170-171页 |
参考文献 | 第171-172页 |
第10章 多糖现代分离纯化研究(HSCCC) | 第172-187页 |
10.1 引言 | 第172页 |
10.2 实验部分 | 第172-175页 |
10.2.1 实验材料 | 第173页 |
10.2.2 实验设备 | 第173页 |
10.2.3 实验方法 | 第173-175页 |
10.3 结果与讨论 | 第175-184页 |
10.3.1 黄芪多糖在PEG-MgSO_4-Water双水相体系中的分配情况 | 第176-178页 |
10.3.2 HSCCC结合双水相法分离纯化黄芪多糖 | 第178-179页 |
10.3.3 纯度和分子量测定 | 第179-180页 |
10.3.4 单糖组成分析 | 第180-181页 |
10.3.5 基本结构特征表征 | 第181-182页 |
10.3.6 HSCCC分离多糖的评价(传统分离方法所得组分作参考) | 第182-184页 |
本章小结 | 第184-185页 |
参考文献 | 第185-187页 |
第11章 结论和展望 | 第187-192页 |
11.1 结论 | 第187-190页 |
11.2 展望 | 第190-192页 |
致谢 | 第192-193页 |
附录 | 第193-199页 |
攻读学位期间的研究成果 | 第199-200页 |