| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 缩略语 | 第12-14页 |
| 前言 | 第14-17页 |
| 研究现状、成果 | 第14-16页 |
| 研究目的、方法 | 第16-17页 |
| 一、HDAC1稳定过表达和低表达U87MG细胞株的构建 | 第17-47页 |
| 1.1 实验材料 | 第17-28页 |
| 1.1.1 质粒 | 第17-20页 |
| 1.1.2 细胞和菌株 | 第20页 |
| 1.1.3 实验仪器与材料 | 第20-21页 |
| 1.1.4 试剂与药品 | 第21-24页 |
| 1.1.5 溶液配制 | 第24-28页 |
| 1.2 实验方法 | 第28-40页 |
| 1.2.1 HDAC1过表达细胞株构建实验流程 | 第28-38页 |
| 1.2.2 HDAC1下调细胞株构建实验流程 | 第38-40页 |
| 1.2.3 数据处理 | 第40页 |
| 1.3 结果 | 第40-43页 |
| 1.3.1 HDAC1基因PCR产物的回收 | 第40页 |
| 1.3.2 pCDH-CMV-MCS-HDAC1-EF1-Puro重组质粒的酶切鉴定及测序 | 第40-41页 |
| 1.3.3 Western Blot检测HDAC1过表达结果 | 第41-42页 |
| 1.3.4 GV248-HDAC1-RNAi阳性克隆测序结果 | 第42页 |
| 1.3.5 慢病毒GV248-HDAC1-RNAi转染后荧光强度 | 第42页 |
| 1.3.6 Western Blot法检测HDAC1下调结果 | 第42-43页 |
| 1.4 小结 | 第43页 |
| 1.5 讨论 | 第43-47页 |
| 二、HDAC1过表达和低表达对胶质瘤化疗药物耐药性的影响 | 第47-66页 |
| 2.1 实验材料 | 第47-48页 |
| 2.1.1 细胞 | 第47页 |
| 2.1.2 实验仪器与耗材 | 第47页 |
| 2.1.3 药品与试剂 | 第47页 |
| 2.1.4 主要溶液配制 | 第47-48页 |
| 2.2 实验方法 | 第48-49页 |
| 2.2.1 实验分组 | 第48页 |
| 2.2.2 MTT法检测药物敏感性 | 第48页 |
| 2.2.3 Hoechst 33258/PI双染法检测细胞凋亡 | 第48-49页 |
| 2.2.4 Western Blot检测凋亡相关蛋白 | 第49页 |
| 2.2.5 数据处理 | 第49页 |
| 2.3 结果 | 第49-60页 |
| 2.3.1 细胞药物敏感性的改变 | 第49-53页 |
| 2.3.2 细胞形态的改变 | 第53-57页 |
| 2.3.3 凋亡相关蛋白的检测结果 | 第57-60页 |
| 2.4 小结 | 第60-61页 |
| 2.5 讨论 | 第61-66页 |
| 结论 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-75页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第75-76页 |
| 综述 HDAC1及其抑制剂在细胞中的作用 | 第76-85页 |
| 综述参考文献 | 第81-85页 |
| 致谢 | 第85-86页 |
| 个人简历 | 第86页 |
