摘要 | 第4-6页 |
ABSTRACT | 第6-7页 |
第1章 绪论 | 第18-35页 |
1.1 课题背景及研究的目的和意义 | 第18-19页 |
1.2 电离辐射氧化损伤与防护 | 第19-24页 |
1.2.1 电离辐射氧化损伤的概述 | 第19-20页 |
1.2.2 辐射损伤防护的研究进展 | 第20-22页 |
1.2.3 天然产物的研究现状 | 第22-24页 |
1.3 植物多酚类化合物的研究进展 | 第24-27页 |
1.3.1 多酚类化合物分类 | 第25页 |
1.3.2 原花青素的研究进展 | 第25-27页 |
1.4 黑木耳多糖的研究进展 | 第27-29页 |
1.4.1 黑木耳多糖的分离和结构鉴定 | 第27-28页 |
1.4.2 黑木耳多糖抗氧化活性研究 | 第28-29页 |
1.5 天然产物之间协同效应的研究进展 | 第29-34页 |
1.5.1 协同效应概述 | 第29页 |
1.5.2 协同效应评价方法 | 第29-32页 |
1.5.3 天然产物之间的协同效应 | 第32-34页 |
1.6 本文的主要研究内容 | 第34-35页 |
第2章 实验材料与方法 | 第35-51页 |
2.1 实验材料与仪器设备 | 第35-37页 |
2.1.1 原料 | 第35页 |
2.1.2 仪器设备 | 第35-36页 |
2.1.3 实验药品与试剂 | 第36-37页 |
2.2 黑木耳多糖的提取和纯化 | 第37-38页 |
2.2.1 黑木耳预处理 | 第37页 |
2.2.2 黑木耳多糖的提取 | 第37页 |
2.2.3 黑木耳多糖的纯化 | 第37-38页 |
2.3 黑木耳多糖的结构与形貌表征 | 第38-39页 |
2.3.1 分子量测定(HPLC/GPC) | 第38页 |
2.3.2 傅里叶红外光谱分析 | 第38页 |
2.3.3 单糖组成成分分析 | 第38-39页 |
2.3.4 单糖甲基化分析 | 第39页 |
2.3.5 核磁共振谱分析 | 第39页 |
2.3.6 原子力显微镜表征 | 第39页 |
2.4 抗氧化活性的测定 | 第39-42页 |
2.4.1 ABTS法 | 第39-40页 |
2.4.2 DPPH法 | 第40页 |
2.4.3 羟自由基清除(OH~·)能力 | 第40-41页 |
2.4.4 超氧阴离子自由基清除(O_2~(-·))能力 | 第41页 |
2.4.5 总还原能力 | 第41页 |
2.4.6 脂质过氧化作用 | 第41-42页 |
2.5 细胞实验 | 第42-45页 |
2.5.1 大鼠脾细胞的制备及分组 | 第42-43页 |
2.5.2 细胞活力的测定 | 第43页 |
2.5.3 细胞增殖能力的测定 | 第43-44页 |
2.5.4 细胞辐照模型 | 第44页 |
2.5.5 细胞碘化丙啶(PI)染色 | 第44页 |
2.5.6 细胞 7'-2'-二氯二乙酸酯(DCF-DA)检测 | 第44页 |
2.5.7 细胞生物学指标的测定 | 第44-45页 |
2.6 动物实验 | 第45-49页 |
2.6.1 实验动物的饲养及分组 | 第45页 |
2.6.2 动物辐照模型 | 第45页 |
2.6.3 体重及脏器指数的测定 | 第45-46页 |
2.6.4 血常规分析 | 第46页 |
2.6.5 骨髓微核的测定 | 第46页 |
2.6.6 染色体畸变的测定 | 第46页 |
2.6.7 碳廓清指数的测定 | 第46-47页 |
2.6.8 生化指标的测定 | 第47页 |
2.6.9 脾细胞周期和凋亡的测定 | 第47-48页 |
2.6.10 脾组织石蜡包埋方法 | 第48页 |
2.6.11 脾组织免疫组化的方法 | 第48-49页 |
2.7 联合作用指数分析 | 第49-50页 |
2.7.1 剂量-效应分析 | 第49页 |
2.7.2 联合作用指数(CI) | 第49-50页 |
2.8 统计分析 | 第50-51页 |
第3章 黑木耳多糖与多酚体外协同抗氧化活性 | 第51-66页 |
3.1 引言 | 第51页 |
3.2 黑木耳多糖与多酚的协同抗氧化活性筛选 | 第51-56页 |
3.2.1 黑木耳多糖与多酚清除ABTS~(+·)自由基能力 | 第51-54页 |
3.2.2 黑木耳多糖与多酚清除DPPH~·自由基能力 | 第54-56页 |
3.3 AAP与GSP清除ABTS~(+·)自由基能力 | 第56-57页 |
3.4 AAP与GSP清除DPPH~·自由基清除能力 | 第57-59页 |
3.5 AAP与GSP清除羟基自由基能力 | 第59-60页 |
3.6 AAP与GSP清除超氧阴离子自由基能力 | 第60-62页 |
3.7 AAP与GSP对总还原能力的影响 | 第62-63页 |
3.8 AAP与GSP对脂质过氧化的影响 | 第63-65页 |
3.9 本章小结 | 第65-66页 |
第4章 AAP的组成分析及结构表征 | 第66-82页 |
4.1 引言 | 第66页 |
4.2 AAP的初级结构分析 | 第66-68页 |
4.3 AAP的分离纯化 | 第68-72页 |
4.3.1 AAP的DEAE-52 离子交换层析 | 第68-71页 |
4.3.2 AAP-4 的Sephadex G-200 凝胶层析 | 第71-72页 |
4.4 AAP-4 的组成与结构表征 | 第72-80页 |
4.4.1 红外光谱分析 | 第72-74页 |
4.4.2 紫外光谱分析 | 第74页 |
4.4.3 相对分子量和分布的分析 | 第74-76页 |
4.4.4 单糖组成分析 | 第76-77页 |
4.4.5 甲基化分析 | 第77页 |
4.4.6 核磁光谱分析 | 第77-79页 |
4.4.7 原子力显微镜表征 | 第79-80页 |
4.5 本章小结 | 第80-82页 |
第5章 AAP-4 与GSP对辐射诱导脾细胞损伤的协同防护效应 | 第82-97页 |
5.1 引言 | 第82-83页 |
5.2 AAP-4 与GSP对脾细胞的毒性 | 第83-84页 |
5.3 AAP-4 与GSP对脾细胞存活率的影响 | 第84-85页 |
5.4 AAP-4 与GSP促脾细胞增殖活性 | 第85-87页 |
5.5 AAP-4 与GSP对脾细胞抗氧化酶的影响 | 第87-90页 |
5.5.1 AAP-4 与GSP对脾细胞T-SOD的影响 | 第87-88页 |
5.5.2 AAP-4 与GSP对脾细胞CAT的影响 | 第88-89页 |
5.5.3 AAP-4 与GSP对脾细胞GSH-PX酶的影响 | 第89-90页 |
5.6 AAP-4 与GSP对脾细胞GSH含量的影响 | 第90-91页 |
5.7 AAP-4 与GSP对脾细胞MDA含量的影响 | 第91-93页 |
5.8 AAP-4 与GSP对脾细胞ROS的影响 | 第93-94页 |
5.9 AAP-4 与GSP对脾细胞凋亡水平的影响 | 第94-96页 |
5.10 本章小结 | 第96-97页 |
第6章 AAP-4 与GSP对辐射诱导小鼠氧化应激的协同防护作用 | 第97-124页 |
6.1 引言 | 第97页 |
6.2 AAP-4 与GSP对小鼠体重的影响 | 第97-98页 |
6.3 AAP-4 与GSP对小鼠器官指数的影响 | 第98-100页 |
6.4 AAP-4 与GSP对辐射后小鼠外周血参数的影响 | 第100-101页 |
6.5 AAP-4 与GSP对小鼠脾细胞增殖能力的影响 | 第101页 |
6.6 AAP-4 与GSP对小鼠单核巨噬细胞吞噬活性的影响 | 第101-102页 |
6.7 AAP-4 与GSP对辐射条件下小鼠抗氧化系统的影响 | 第102-108页 |
6.7.1 AAP-4 与GSP对小鼠体内抗氧化酶系的作用 | 第103-106页 |
6.7.2 AAP-4 与GSP对小鼠MDA水平的影响 | 第106-107页 |
6.7.3 AAP-4 与GSP对小鼠体内抗氧化物合成能力的影响 | 第107-108页 |
6.8 AAP-4 与GSP对辐射诱导小鼠DNA损伤的防护作用 | 第108-111页 |
6.8.1 AAP-4 与GSP对小鼠染色体畸变的影响 | 第108-109页 |
6.8.2 AAP-4 与GSP对小鼠骨髓微核的影响 | 第109-111页 |
6.9 AAP-4 与GSP对辐射诱导损伤的协同防护机制的研究 | 第111-122页 |
6.9.1 AAP-4 与GSP对小鼠脾细胞形态学的影响 | 第111-112页 |
6.9.2 AAP-4 与GSP对小鼠脾细胞周期的影响 | 第112-113页 |
6.9.3 AAP-4 与GSP对小鼠脾细胞凋亡的影响 | 第113-115页 |
6.9.4 AAP-4 与GSP对小鼠脾细胞凋亡相关蛋白表达的影响 | 第115-122页 |
6.10 本章小结 | 第122-124页 |
结论 | 第124-125页 |
创新点 | 第125页 |
展望 | 第125-126页 |
参考文献 | 第126-146页 |
附录 | 第146-147页 |
攻读博士学位期间发表的论文及其它成果 | 第147-150页 |
致谢 | 第150-151页 |
个人简历 | 第151页 |