| 摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第17-31页 |
| 1.1 AM真菌的分类与分离 | 第17-19页 |
| 1.1.1 AM真菌分类地位 | 第17-18页 |
| 1.1.2 AM真菌分离与鉴定 | 第18-19页 |
| 1.2 水分胁迫下植物水分状况与AM真菌的关系 | 第19-22页 |
| 1.2.1 水分胁迫对植物水分代谢的影响 | 第19-20页 |
| 1.2.2 AM真菌对植物水分状况的影响 | 第20-22页 |
| 1.3 水分胁迫下植物光合能力与AM真菌的关系 | 第22-24页 |
| 1.3.1 水分胁迫对植物生长和光合作用的影响 | 第22-23页 |
| 1.3.2 AM真菌对植物光合能力的影响 | 第23-24页 |
| 1.4 水分胁迫下植物糖水平与AM真菌的关系 | 第24-26页 |
| 1.4.1 水分胁迫对植物糖水平的影响 | 第24-25页 |
| 1.4.2 AM真菌对植物糖水平的影响 | 第25-26页 |
| 1.5 植物磷吸收与AM真菌的关系 | 第26-28页 |
| 1.5.1 土壤磷存在状况与水分胁迫的关系 | 第26页 |
| 1.5.2 植物磷吸收策略 | 第26-27页 |
| 1.5.3 植物磷酸盐转运蛋白 | 第27-28页 |
| 1.5.4 AM真菌诱导的磷酸盐转运蛋白 | 第28页 |
| 1.6 研究目的与意义 | 第28-31页 |
| 1.6.1 水分胁迫和AM真菌对宁夏枸杞水分状况、光合与糖水平的影响 | 第29-30页 |
| 1.6.2 水分胁迫和AM真菌对宁夏枸杞磷代谢的影响 | 第30-31页 |
| 第二章 宁夏枸杞根际AM真菌群落对菌丝室磷处理的响应 | 第31-45页 |
| 2.1 引言 | 第31页 |
| 2.2 试验设计 | 第31-37页 |
| 2.2.1 样品采集 | 第31页 |
| 2.2.2 在菌丝室不同浓度磷处理下AM真菌的富集培养 | 第31-32页 |
| 2.2.3 根系AM真菌定殖率的测定 | 第32-33页 |
| 2.2.4 AM真菌的分子鉴定与AM真菌群落的DGGE电泳 | 第33-37页 |
| 2.2.4.1 AM真菌的分子鉴定 | 第33-34页 |
| 2.2.4.2 菌丝室不同磷浓度处理下的根、土和沙中AM真菌群落的DGGE电泳 | 第34-37页 |
| 2.3 数据处理 | 第37-38页 |
| 2.4 结果与分析 | 第38-42页 |
| 2.4.1 菌丝室不同磷浓度处理下AM真菌的定殖率 | 第38页 |
| 2.4.2 AM真菌的单孢分子鉴定 | 第38-39页 |
| 2.4.3 菌丝室不同磷浓度处理下AM真菌群落的变化 | 第39-42页 |
| 2.5 讨论 | 第42-45页 |
| 2.5.1 AM真菌富集培养和分子鉴定 | 第42页 |
| 2.5.2 AM真菌群落对于菌丝室不同供磷条件的响应 | 第42-45页 |
| 第三章 水分胁迫下丛枝菌根真菌对宁夏枸杞水分、光合和糖水平的影响 | 第45-66页 |
| 3.1 引言 | 第45-46页 |
| 3.2 材料与方法 | 第46-52页 |
| 3.2.1 试验材料 | 第46页 |
| 3.2.2 试验设计 | 第46-47页 |
| 3.2.3 叶片气体交换与叶绿素荧光参数测定 | 第47页 |
| 3.2.4 植株生长以及叶片水分状况测定 | 第47-48页 |
| 3.2.5 叶片光合色素测定 | 第48页 |
| 3.2.6 根系AM真菌定殖率 | 第48页 |
| 3.2.7 宁夏枸杞根系水孔蛋白基因的转录检测 | 第48-51页 |
| 3.2.7.1 宁夏枸杞和根内球囊霉水孔蛋白基因的筛选与序列分析 | 第48页 |
| 3.2.7.2 宁夏枸杞和根内球囊霉水孔蛋白基因的实时荧光定量PCR检测 | 第48-51页 |
| 3.2.8 植株糖水平的测定 | 第51-52页 |
| 3.2.8.1 宁夏枸杞根和叶中可溶性糖和淀粉的测定 | 第51页 |
| 3.2.8.2 宁夏枸杞根和叶中单双糖类化合物的测定 | 第51-52页 |
| 3.3 数据处理 | 第52页 |
| 3.4 结果与分析 | 第52-61页 |
| 3.4.1 AM真菌对水分胁迫下宁夏枸杞生长、水分状况和光合作用的影响 | 第52-56页 |
| 3.4.2 宁夏枸杞和AM真菌水孔蛋白基因在水分胁迫下根系中的转录水平 | 第56-58页 |
| 3.4.3 AM真菌对水分胁迫下宁夏枸杞糖水平的影响 | 第58-61页 |
| 3.5 讨论 | 第61-66页 |
| 3.5.1 AM真菌和水分胁迫对宁夏枸杞生长、水分状况以及光合作用的影响 | 第61-62页 |
| 3.5.2 AM真菌和水分胁迫对宁夏枸杞及AM真菌的水孔蛋白基因转录的影响 | 第62-63页 |
| 3.5.3 AM真菌和水分胁迫对宁夏枸杞糖水平的影响 | 第63-66页 |
| 第四章 水分胁迫下丛枝菌根真菌对宁夏枸杞磷表现的影响 | 第66-73页 |
| 4.1 引言 | 第66页 |
| 4.2 材料与方法 | 第66-68页 |
| 4.2.1 试验材料 | 第66页 |
| 4.2.2 试验设计 | 第66-67页 |
| 4.2.3 AM真菌定殖率测定 | 第67页 |
| 4.2.4 植株磷含量测定 | 第67页 |
| 4.2.5 根系酸性磷酸酶水平测定 | 第67-68页 |
| 4.2.6 叶片花青素含量测定 | 第68页 |
| 4.3 数据处理 | 第68页 |
| 4.4 结果与分析 | 第68-71页 |
| 4.4.1 水分胁迫下的AM真菌定殖率 | 第68-69页 |
| 4.4.2 水分胁迫与AM真菌对宁夏枸杞生长、磷含量的影响 | 第69页 |
| 4.4.3 水分胁迫与AM真菌对宁夏枸杞根系酸性磷酸酶和叶片花青素的影响 | 第69-71页 |
| 4.5 讨论 | 第71-73页 |
| 4.5.1 水分胁迫下AM真菌对宁夏枸杞生长与磷表现的影响 | 第71-73页 |
| 第五章 宁夏枸杞磷酸盐转运蛋白基因和启动子区域的克隆 | 第73-84页 |
| 5.1 引言 | 第73-74页 |
| 5.2 材料与方法 | 第74-78页 |
| 5.2.1 RNA的提取与cDNA的合成 | 第74页 |
| 5.2.2 DNA的提取 | 第74页 |
| 5.2.2.1 植物基因组DNA的提取 | 第74页 |
| 5.2.2.2 基因组DNA的浓度、纯度及完整性检测 | 第74页 |
| 5.2.3 基于CODE-HOP和RFLP的宁夏枸杞磷酸盐转运蛋白基因保守片段的克隆 | 第74-75页 |
| 5.2.4 LbPT1~LbPT5和LbPT7的全长克隆 | 第75-77页 |
| 5.2.4.1 基因特异性引物的设计 | 第75页 |
| 5.2.4.2 3’RACE与 5’RACE用cDNA的合成 | 第75-76页 |
| 5.2.4.3 3’和 5’RACE扩增 | 第76-77页 |
| 5.2.4.4 全长cDNA的获得与验证 | 第77页 |
| 5.2.5 宁夏枸杞磷酸盐转运蛋白基因启动子区域扩增 | 第77-78页 |
| 5.2.5.1 扩增启动子用基因特异性引物的设计 | 第77页 |
| 5.2.5.2 LbPT1~LbPT5和LbPT7基因启动子区域扩增 | 第77-78页 |
| 5.3 数据处理 | 第78-79页 |
| 5.4 结果与分析 | 第79-80页 |
| 5.4.1 宁夏枸杞磷酸盐转运蛋白基因的分析 | 第79页 |
| 5.4.2 宁夏枸杞磷酸盐转运蛋白基因的启动子区域分析 | 第79-80页 |
| 5.5 讨论 | 第80-84页 |
| 5.5.1 宁夏枸杞磷酸盐转运蛋白基因的生物信息学分析 | 第80页 |
| 5.5.2 宁夏枸杞磷酸盐转运蛋白基因启动子的顺式作用元件分析 | 第80-84页 |
| 第六章 宁夏枸杞磷酸盐转运蛋白的功能验证与亚细胞定位 | 第84-96页 |
| 6.1 引言 | 第84-85页 |
| 6.2 材料与方法 | 第85-88页 |
| 6.2.1 试验材料 | 第85页 |
| 6.2.2 载体构建 | 第85页 |
| 6.2.3 酵母遗传转化 | 第85-86页 |
| 6.2.4 酵母生长表现的测定 | 第86-87页 |
| 6.2.5 酵母酸性磷酸酶活性的检测 | 第87页 |
| 6.2.6 宁夏枸杞磷酸盐转运蛋白基因在烟草叶片与根系上的瞬时表达 | 第87-88页 |
| 6.2.6.1 农杆菌电转感受态细胞的制备以及质粒转化 | 第87-88页 |
| 6.2.6.2 瞬时表达的转染及检测 | 第88页 |
| 6.3 结果与分析 | 第88-93页 |
| 6.3.1 宁夏枸杞磷酸盐转运蛋白在酵母中的功能分析 | 第88-90页 |
| 6.3.2 宁夏枸杞磷酸盐转运蛋白的亚细胞定位分析 | 第90-93页 |
| 6.4 讨论 | 第93-96页 |
| 6.4.1 宁夏枸杞磷酸盐转运蛋白的功能 | 第93-94页 |
| 6.4.2 宁夏枸杞磷酸盐转运蛋白的亚细胞定位与功能的关系 | 第94-96页 |
| 第七章 水分胁迫下丛枝菌根真菌对宁夏枸杞磷酸盐转运蛋白基因表达的影响 | 第96-111页 |
| 7.1 引言 | 第96页 |
| 7.2 材料与方法 | 第96-99页 |
| 7.2.1 试验材料 | 第96页 |
| 7.2.2 试验设计 | 第96-97页 |
| 7.2.3 AM真菌定殖率测定 | 第97页 |
| 7.2.4 宁夏枸杞磷酸盐转运蛋白基因菌根化特性和组织特异性转录检测 | 第97页 |
| 7.2.5 宁夏枸杞磷酸盐转运蛋白基因在磷处理和水分胁迫下的转录检测 | 第97-98页 |
| 7.2.6 宁夏枸杞磷酸盐转运蛋白基因在不同叶龄叶片的转录检测 | 第98页 |
| 7.2.7 宁夏枸杞磷酸盐转运蛋白基因在乙烯处理下的转录反应 | 第98-99页 |
| 7.3 数据处理 | 第99页 |
| 7.4 结果与分析 | 第99-105页 |
| 7.4.1 AM真菌在磷处理下的定殖率 | 第99-100页 |
| 7.4.2 宁夏枸杞磷酸盐转运蛋白基因的菌根诱导性及组织特异性表达 | 第100页 |
| 7.4.3 AM真菌和磷处理对宁夏枸杞磷酸盐转运蛋白基因转录水平的影响 | 第100-102页 |
| 7.4.4 AM真菌和水分胁迫对宁夏枸杞磷酸盐转运蛋白基因转录水平的影响 | 第102-103页 |
| 7.4.5 乙烯处理对AM真菌定殖与磷酸盐转运蛋白基因转录水平的影响 | 第103-105页 |
| 7.5 讨论 | 第105-111页 |
| 7.5.1 宁夏枸杞磷酸盐转运蛋白基因功能的分化与保守 | 第105-107页 |
| 7.5.2 AM真菌与磷和乙烯的关系 | 第107-109页 |
| 7.5.3 AM真菌对水分胁迫下宁夏枸杞磷酸盐转运蛋白基因表达的影响 | 第109-111页 |
| 第八章 结论与展望 | 第111-115页 |
| 8.1 研究特色与创新之处 | 第111-112页 |
| 8.2 研究结论 | 第112-114页 |
| 8.3 研究展望 | 第114-115页 |
| 参考文献 | 第115-134页 |
| 附录 | 第134-155页 |
| 缩略词 | 第155-156页 |
| 致谢 | 第156-157页 |
| 作者简介 | 第157页 |
