| 摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 符号说明 | 第11-12页 |
| 前言 | 第12-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-23页 |
| 1.1 生物表面活性剂概述 | 第13-14页 |
| 1.1.1 生物表面活性剂的特性 | 第13页 |
| 1.1.2 生物表面活性剂的分类 | 第13-14页 |
| 1.2 海藻糖脂结构及性质 | 第14-16页 |
| 1.2.1 分子结构 | 第14-15页 |
| 1.2.2 理化性质 | 第15-16页 |
| 1.2.3 生物学活性 | 第16页 |
| 1.3 海藻糖脂的微生物来源 | 第16-18页 |
| 1.3.1 主要微生物来源 | 第16-17页 |
| 1.3.2 红平红球菌 | 第17-18页 |
| 1.4 海藻糖脂的提取和纯化 | 第18-19页 |
| 1.4.1 沉淀法 | 第18页 |
| 1.4.2 萃取法 | 第18-19页 |
| 1.4.3 柱色谱法 | 第19页 |
| 1.5 海藻糖脂的鉴定 | 第19-21页 |
| 1.5.1 薄层层析法 | 第19-20页 |
| 1.5.2 红外光谱法 | 第20页 |
| 1.5.3 高效液相色谱法 | 第20页 |
| 1.5.4 核磁共振法 | 第20-21页 |
| 1.6 海藻糖脂的应用 | 第21-22页 |
| 1.6.1 石油工业 | 第21页 |
| 1.6.2 环境工程 | 第21页 |
| 1.6.3 医疗方面 | 第21-22页 |
| 1.7 研究意义及前景 | 第22-23页 |
| 第二章 红平红球菌所产海藻糖脂的初步研究 | 第23-36页 |
| 2.1 实验材料 | 第23-26页 |
| 2.1.1 实验菌株 | 第23页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第23-24页 |
| 2.1.3 实验试剂及药品 | 第24-25页 |
| 2.1.4 试剂配制 | 第25页 |
| 2.1.5 培养基与培养条件 | 第25-26页 |
| 2.2 实验方法 | 第26-28页 |
| 2.2.1 菌株的保存 | 第26页 |
| 2.2.2 菌株的活化 | 第26页 |
| 2.2.3 菌落特征及革兰氏染色 | 第26页 |
| 2.2.4 初始培养基的筛选 | 第26页 |
| 2.2.5 萃取剂的筛选 | 第26页 |
| 2.2.6 生物表面活性剂的定性分析 | 第26-27页 |
| 2.2.7 生物表面活性剂的理化性质 | 第27-28页 |
| 2.3 结果与分析 | 第28-35页 |
| 2.3.1 菌落特征及革兰氏染色 | 第28页 |
| 2.3.2 初始培养基的筛选 | 第28-29页 |
| 2.3.3 萃取剂的筛选 | 第29-30页 |
| 2.3.4 生物表面活性剂的定性分析 | 第30页 |
| 2.3.5 海藻糖脂的理化性质 | 第30-35页 |
| 2.4 本章小结 | 第35-36页 |
| 第三章 红平红球菌产海藻糖脂的发酵条件优化 | 第36-59页 |
| 3.1 实验材料 | 第36-37页 |
| 3.1.1 实验菌种 | 第36页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第36-37页 |
| 3.1.3 实验试剂及药品 | 第37页 |
| 3.1.4 培养基与培养条件 | 第37页 |
| 3.2 测定指标 | 第37-38页 |
| 3.2.1 生物量 | 第37页 |
| 3.2.2 海藻糖脂的提取 | 第37-38页 |
| 3.3 实验方法 | 第38-40页 |
| 3.3.1 菌株的活化与保存 | 第38页 |
| 3.3.2 种子液培养 | 第38页 |
| 3.3.3 生长曲线及海藻糖脂产量曲线的绘制 | 第38页 |
| 3.3.4 培养基组成对红平红球菌XH-1 产海藻糖脂的影响 | 第38-39页 |
| 3.3.5 培养条件对红平红球菌XH-1 产海藻糖脂的影响 | 第39-40页 |
| 3.3.6 Plackett-Burman实验 | 第40页 |
| 3.3.7 最陡爬坡实验 | 第40页 |
| 3.3.8 Box-Behnken实验设计 | 第40页 |
| 3.3.9 验证实验 | 第40页 |
| 3.4 结果与分析 | 第40-58页 |
| 3.4.1 生长曲线及海藻糖脂产量曲线的绘制 | 第40-41页 |
| 3.4.2 培养基组成对红平红球菌XH-1 产海藻糖脂的影响 | 第41-47页 |
| 3.4.3 培养条件对红平红球菌XH-1 产海藻糖脂的影响 | 第47-51页 |
| 3.4.4 Plackett-Burman实验 | 第51-53页 |
| 3.4.5 最陡爬坡实验 | 第53页 |
| 3.4.6 Box-Behnken实验设计 | 第53-57页 |
| 3.4.7 验证实验 | 第57-58页 |
| 3.5 本章小结 | 第58-59页 |
| 第四章 海藻糖脂的抑菌活性 | 第59-70页 |
| 4.1 实验材料 | 第59-61页 |
| 4.1.1 实验菌株 | 第59-60页 |
| 4.1.2 实验仪器 | 第60-61页 |
| 4.1.3 实验试剂及药品 | 第61页 |
| 4.1.4 培养基 | 第61页 |
| 4.2 实验方法 | 第61-63页 |
| 4.2.1 活化菌株 | 第61-62页 |
| 4.2.2 霉菌孢子悬液的制备 | 第62页 |
| 4.2.3 酵母及细菌菌悬液的制备 | 第62页 |
| 4.2.4 海藻糖脂溶液的配制 | 第62页 |
| 4.2.5 海藻糖脂YPD平板的制备 | 第62页 |
| 4.2.6 海藻糖脂对霉菌的抑制作用 | 第62页 |
| 4.2.7 海藻糖脂对酵母及细菌的抑制作用 | 第62-63页 |
| 4.3 结果与分析 | 第63-69页 |
| 4.3.1 海藻糖脂对霉菌的抑制作用 | 第63-67页 |
| 4.3.2 海藻糖脂对酵母及细菌的抑制作用 | 第67-69页 |
| 4.4 本章小结 | 第69-70页 |
| 第五章 分离纯化 | 第70-77页 |
| 5.1 实验材料 | 第70-71页 |
| 5.1.1 实验菌株 | 第70页 |
| 5.1.2 实验仪器 | 第70页 |
| 5.1.3 实验试剂及药品 | 第70页 |
| 5.1.4 培养基与培养条件 | 第70-71页 |
| 5.1.5 试剂配制 | 第71页 |
| 5.2 实验方法 | 第71-72页 |
| 5.2.1 海藻糖脂的提取 | 第71页 |
| 5.2.2 薄层层析板的制备 | 第71页 |
| 5.2.3 展开剂的选取 | 第71-72页 |
| 5.2.4 样品的制备薄层层析 | 第72页 |
| 5.2.5 LC-MS分析 | 第72页 |
| 5.3 结果与分析 | 第72-76页 |
| 5.3.1 展开剂的选取 | 第72-73页 |
| 5.3.2 样品的制备薄层层析 | 第73-74页 |
| 5.3.3 LC-MS分析 | 第74-76页 |
| 5.4 本章小结 | 第76-77页 |
| 结论 | 第77-78页 |
| 参考文献 | 第78-84页 |
| 附录 | 第84-85页 |
| 致谢 | 第85-86页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第86-87页 |
