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TACO特异性siRNA靶向载体系统的构建及鉴定

摘要第1-6页
ABSTRACT第6-13页
第1章 引言第13-17页
第2章 TACO特异性siRNA真核表达质粒的构建第17-26页
   ·材料第17-18页
     ·质粒及菌株第17页
     ·主要试剂第17-18页
     ·主要仪器设备第18页
     ·部分溶液的配制第18页
   ·实验方法第18-21页
     ·siRNA的靶序列确定第18-19页
     ·单链退火第19页
     ·连接第19-20页
     ·感受态大肠杆菌的制备和连接产物转化感受态细胞第20-21页
     ·重组质粒pST1/2/3/4鉴定第21页
   ·结果第21-24页
     ·siRNA的设计第21-22页
     ·siRNA表达质粒的鉴定及测序第22-24页
   ·讨论第24-26页
第3章 siRNA真核表达质粒在细胞内的表达及其抑制TACO表达效果的检测第26-48页
   ·材料第26-29页
     ·质粒及菌株第26页
     ·所使用的引物第26-27页
     ·主要试剂第27页
     ·主要仪器设备第27页
     ·部分溶液的配制第27-29页
   ·实验方法第29-39页
     ·TACO标准曲线质粒的构建第29-32页
     ·TACO标准曲线的建立第32页
     ·RAW264.7细胞中RNA水平检测taco的变化第32-34页
     ·RAW264.7细胞中蛋白质水平检测TACO的变化第34-36页
     ·在转染RAW264.7细胞后细胞免疫荧光第36-37页
     ·p3.1RT表达质粒的构建及p3.1RT表达质粒和pST干扰质粒共转染293T细胞第37-39页
   ·结果第39-46页
     ·RT-PCR方法扩增获取taco基因片段(128bp)第39页
     ·重组质粒pQE30T双酶切结果第39-40页
     ·TACO基因标准曲线的建立第40-41页
     ·转染RAW264.7细胞荧光显微镜观察第41-42页
     ·用转染RAW264.7细胞后实时荧光定量PCR检测TACO的变化第42页
     ·用质粒转染RAW264.7后细胞免疫荧光观察TACO的变化第42页
     ·用质粒转染RAW264.7后细胞免疫荧光观察TACO的变化第42-44页
     ·扩增TACOKL1383bp后,经1%琼脂糖凝胶电泳结果第44页
     ·重组质粒p3.1RT经KpnI和EcoRI双酶切鉴定第44-45页
     ·重组质经KpnI和XbaI双酶切第45页
     ·重组质粒p3.1RT测序图第45-46页
     ·重组质粒pCDNA3.1-Red-taco在293T细胞中的表达第46页
     ·将干扰质粒和TACO表达质粒共转染293T,Western blot检测TACO的变化第46页
   ·讨论第46-48页
第4章 重组耻垢分枝杆菌菌苗rMs-pSTM的构建及其靶向性检测第48-56页
   ·材料第48-49页
     ·质粒及菌株第48页
     ·主要试剂第48页
     ·主要仪器设备第48页
     ·部分溶液的配制第48-49页
   ·实验方法第49-52页
     ·ORIM连入siRNA表达质粒pST得到pSTM第49-50页
     ·pSTM电穿孔入Ms1-2c第50页
     ·重组耻垢分枝杆菌菌苗rMS-pSTM的鉴定第50-51页
     ·Ms1-2c、rMS-pUV15和重组耻垢分枝杆菌菌苗rMS-pSTM的靶向性检测第51-52页
   ·结果第52-55页
     ·ORIM连入siRNA表达质粒pST得到重组质粒pSTM后,酶切鉴定第52-53页
     ·将pSTM1/pSTM2/pSTM3/pSTM4电穿孔入Ms1-2c后,菌落PCRORIM结果第53页
     ·耻垢分枝杆菌Ms1-2c和rMS-pUV15靶向巨噬细胞效果第53-54页
     ·重组耻垢分枝杆菌菌苗rMs-pSTM的靶向性检测第54-55页
   ·讨论第55-56页
全文小结第56-58页
致谢第58-59页
参考文献第59-61页
攻读学位期间的研究成果第61-62页
综述第62-68页
 参考文献第67-68页

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