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白桦成花调控因子BpFLC及BpSVP协同调控晚花的作用机理研究

摘要第3-5页
Abstract第5-6页
1 绪论第13-25页
    1.1 引言第13-21页
        1.1.1 光周期途径第13-16页
        1.1.2 春化途径第16-18页
        1.1.3 赤霉素途径第18-20页
        1.1.4 自主途径第20-21页
    1.2 FLC与SVP简介第21-23页
        1.2.1 FLC第21-22页
        1.2.2 SVP第22-23页
    1.3 研究目的及意义第23-24页
    1.4 技术路线第24-25页
2 白桦BpFLC的功能分析第25-54页
    2.1 材料与方法第25-35页
        2.1.1 植物材料第25页
        2.1.2 BpFLC的应答检测第25-27页
        2.1.3 BpFLC启动子的功能验证第27-33页
        2.1.4 拟南芥flc突变体的功能恢复验证第33-35页
        2.1.5 BpFLC在拟南芥中的过表达验证第35页
    2.2 结果与分析第35-52页
        2.2.1 白桦BpFLC在不同组织对春化的应答分析第35页
        2.2.2 白桦BpFLC随全年温度变化的表达分析第35-36页
        2.2.3 白桦BpFLC启动子的功能分析第36-45页
        2.2.4 BpFLC恢复拟南芥flc突变体的功能验证第45-49页
        2.2.5 BpFLC在拟南芥中的异源表达分析第49-52页
    2.3 本章小结第52-54页
3 白桦BpFLC转拟南芥晚花植株的转录组分析第54-75页
    3.1 材料与方法第54-56页
        3.1.1 植物材料第54页
        3.1.2 样品处理与收集第54页
        3.1.3 样品总RNA提取及质量检测第54页
        3.1.4 cDNA文库构建与上机测序第54页
        3.1.5 样品测序与数据分析第54-55页
        3.1.6 qRT-PCR验证第55-56页
    3.2 结果与分析第56-73页
        3.2.1 RNA提取与质量分析第56页
        3.2.2 测序数据质量评估第56-60页
        3.2.3 转基因植株的差异基因分析第60-61页
        3.2.4 no-flowering组差异基因的GO富集第61-67页
        3.2.5 flowering组差异基因的GO富集第67-73页
        3.2.6 实时荧光定量验证相关基因的表达第73页
    3.3 本章小结第73-75页
4 白桦BpSVP基因的克隆及功能分析第75-102页
    4.1 材料与方法第75-79页
        4.1.1 植物材料第75页
        4.1.2 BpSVP基因的生物信息学预测第75页
        4.1.3 BpSVP的组织特异性与应答检测第75-76页
        4.1.4 BpSVP的亚细胞定位第76-77页
        4.1.5 BpSVP启动子功能验证第77页
        4.1.6 BpSVP在拟南芥中的过表达验证第77-79页
    4.2 结果与分析第79-100页
        4.2.1 白桦BpSVP基因的生物信息学分析第79-80页
        4.2.2 白桦BpSVP在不同年份不同组织中的表达分析第80-82页
        4.2.3 白桦BpSVP对春化的应答分析第82-83页
        4.2.4 白桦BpSVP对光照的应答分析第83页
        4.2.5 白桦BpSVP随全年日照变化的表达分析第83-84页
        4.2.6 白桦BpSVP基因的亚细胞定位分析第84-86页
        4.2.7 白桦BpSVP启动子的功能分析第86-92页
        4.2.8 BpSVP在拟南芥中的异源表达分析第92-100页
    4.3 本章小结第100-102页
5 白桦BpFLC与BpSVP的蛋白互作分析第102-120页
    5.1 材料与方法第102-107页
        5.1.1 实验材料第102页
        5.1.2 酵母Bait载体的构建第102-103页
        5.1.3 酵母Prey载体的构建第103页
        5.1.4 自激活检测第103-104页
        5.1.5 毒性检测第104页
        5.1.6 BpFLC和BpSVP的蛋白互作验证第104-105页
        5.1.7 BpFLC截短体的构建第105页
        5.1.8 BpSVP截短体的构建第105-106页
        5.1.9 BpFLC和BpSVP的蛋白同源互作域验证第106页
        5.1.10 BpFLC和BpSVP的蛋白异源互作域验证第106页
        5.1.11 BpFLC和AtFLC、AtSVP的蛋白互作验证第106-107页
    5.2 结果与分析第107-119页
        5.2.1 酵母Bait载体pGBKT7-BpFLC和pGBKT7-BpSVP的构建第107页
        5.2.2 酵母Prey载体pGADT7-BpFLC和pGADT7-BpSVP的构建第107-108页
        5.2.3 酵母载体pGBKT7-BpFLC和pGBKT7-BpSVP的自激活验证第108页
        5.2.4 酵母载体pGBKT7-BpFLC和pGBKT7-BpSVP的毒性验证第108-109页
        5.2.5 BpFLC和BpSVP的蛋白互作验证第109-110页
        5.2.6 酵母Bait载体pGBKT7-BpFLC1-6的构建第110-111页
        5.2.7 酵母Prey载体pGADT7-BpSVP1-6的构建第111-112页
        5.2.8 BpFLC和BpSVP的蛋白同源互作域验证第112-114页
        5.2.9 BpFLC和BpSVP的蛋白异源互作域验证第114-117页
        5.2.10 酵母Bait载体pGBKT7-AtFLC和pGBKT7-AtSVP的构建第117页
        5.2.11 BpFLC和AtFLC、AtSVP的蛋白互作验证第117-119页
    5.3 本章小结第119-120页
6 讨论与结论第120-127页
    6.1 讨论第120-125页
        6.1.1 BpFLC参与春化途径调控植物开花第120-121页
        6.1.2 BpSVP参与光周期途径调控植物开花第121-122页
        6.1.3 SVP与FLC互作对开花时间和基因表达的影响第122-124页
        6.1.4 FLC和SVP在进化上的关系第124页
        6.1.5 多年生植物对冬季低温的响应第124-125页
    6.2 结论第125-126页
    6.3 工作展望第126-127页
参考文献第127-142页
附录第142-147页
攻读学位期间发表的学术论文第147-148页
致谢第148-151页
附件第151-152页

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