| 摘要 | 第1-3页 |
| Summary | 第3-8页 |
| 缩略语表 | 第8-9页 |
| 文献综述 | 第9-16页 |
| 1 卵母细胞的成熟调节 | 第9-10页 |
| 2 蛋白质组学在卵母细胞研究中的意义 | 第10页 |
| 3 卵母细胞蛋白质组学研究进展 | 第10-14页 |
| ·转录和翻译相关蛋白 | 第11-12页 |
| ·代谢活动相关蛋白 | 第12页 |
| ·保护蛋白 | 第12-13页 |
| ·蛋白伴侣分子 | 第13页 |
| ·蛋白质的翻译后修饰 | 第13-14页 |
| 4 卵母细胞蛋白质组学研究的挑战及展望 | 第14-16页 |
| 实验1 绵羊卵母细胞蛋白质组2-DE 图谱的构建及初步分析 | 第16-26页 |
| 1 材料与方法 | 第16-22页 |
| ·试剂与仪器 | 第16页 |
| ·主要溶液配制 | 第16-18页 |
| ·样品的采集 | 第18-19页 |
| ·蛋白质样品的制备 | 第19页 |
| ·蛋白质样品的定量 | 第19-20页 |
| ·Bradford 法 | 第19-20页 |
| ·Ramagli 法 | 第20页 |
| ·双向电泳 | 第20-22页 |
| ·IEF 电泳 | 第20-21页 |
| ·SDS-PAGE 电泳 | 第21-22页 |
| ·凝胶染色和图像分析 | 第22页 |
| 2 实验结果 | 第22-24页 |
| ·蛋白质样品定量结果 | 第22-23页 |
| ·2-DE 图谱分析结果 | 第23-24页 |
| ·Ramagli 法与Bradford 法的比较结果 | 第24页 |
| 3 讨论 | 第24-26页 |
| 实验2 绵羊卵母细胞核成熟、卵丘扩展和激素浓度关系的研究 | 第26-34页 |
| 1 材料与方法 | 第26-29页 |
| ·试剂与仪器 | 第26页 |
| ·主要溶液配制 | 第26-27页 |
| ·细胞培养皿的制备 | 第27页 |
| ·COCs 的采集 | 第27页 |
| ·卵母细胞体外成熟培养 | 第27-28页 |
| ·卵丘扩展分级 | 第28页 |
| ·卵母细胞成熟判定 | 第28页 |
| ·数据分析 | 第28-29页 |
| 2 结果与分析 | 第29-32页 |
| ·卵母细胞培养结果 | 第29-30页 |
| ·E2 对卵母细胞成熟率和卵丘扩展率的影响 | 第30-31页 |
| ·FSH/LH 对卵母细胞成熟率和卵丘扩展率的影响 | 第31-32页 |
| ·卵丘扩展与卵母细胞核成熟的关系 | 第32页 |
| 3 讨论 | 第32-34页 |
| 实验3 绵羊卵母细胞差异蛋白质组学研究 | 第34-45页 |
| 1 材料与方法 | 第34-37页 |
| ·试剂与仪器 | 第34页 |
| ·主要溶液配制 | 第34-35页 |
| ·GV 期和MⅡ期卵母细胞的收集 | 第35页 |
| ·蛋白质样品的制备 | 第35页 |
| ·蛋白质样品的定量 | 第35页 |
| ·双向电泳 | 第35页 |
| ·IEF 电泳 | 第35页 |
| ·SDS-PAGE 电泳 | 第35页 |
| ·凝胶染色和图像分析 | 第35-36页 |
| ·质谱检测 | 第36-37页 |
| ·切胶 | 第36页 |
| ·脱色 | 第36页 |
| ·酶解 | 第36页 |
| ·离子阱质谱检测 | 第36页 |
| ·数据库查询 | 第36-37页 |
| 2 结果 | 第37-42页 |
| ·绵羊GV 期和MⅡ期卵母细胞蛋白差异表达分析结果 | 第37页 |
| ·质谱分析结果 | 第37-42页 |
| 3 讨论 | 第42-45页 |
| ·截短的VP2 | 第42页 |
| ·苹果酸脱氢酶 | 第42-43页 |
| ·谷胱甘肽转移酶M3 | 第43-44页 |
| ·质谱结果不理想的原因分析 | 第44-45页 |
| 结论 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-54页 |
| 致谢 | 第54-55页 |
| 作者简介 | 第55-56页 |
| 导师简介 | 第56-57页 |
