| 中英文缩略词表 | 第1-8页 |
| 中文摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-12页 |
| 前言 | 第12-19页 |
| 1 HIV-1病毒 | 第12-16页 |
| 2 HIV-1假病毒 | 第16-18页 |
| 3 本研究的思路、方法和意义 | 第18-19页 |
| 材料与方法 | 第19-35页 |
| 1 实验材料 | 第19-23页 |
| ·试剂 | 第19页 |
| ·溶液 | 第19-21页 |
| ·细胞 | 第21-22页 |
| ·病毒 | 第22页 |
| ·菌株 | 第22页 |
| ·质粒 | 第22-23页 |
| ·待测化合物和阳性对照药物 | 第23页 |
| ·主要仪器及设备 | 第23页 |
| 2 实验方法 | 第23-35页 |
| ·假病毒筛选药物体系的条件优化及应用 | 第23-28页 |
| ·细胞的复苏与冻存 | 第23-24页 |
| ·DH5α超级感受态细胞制备 | 第24页 |
| ·质粒转化大肠杆菌感受态细胞 | 第24-25页 |
| ·质粒的制备 | 第25-26页 |
| ·VSVG/HIV-1_(NL4-3) Luc的包装 | 第26页 |
| ·细胞系的选择 | 第26页 |
| ·荧光素酶活性分析 | 第26页 |
| ·VSVG/HIV-1_(NL4-3) Luc感染性检测 | 第26-27页 |
| ·3种实验条件下阳性药物的检测 | 第27-28页 |
| ·化合物筛选 | 第28页 |
| ·抗HIV-1活性研究 | 第28-33页 |
| ·病毒滴度的测定 | 第28-29页 |
| ·HIV-1实验株和耐药株培养 | 第29页 |
| ·HIV-1临床分离病毒株培养 | 第29页 |
| ·PBMC的分离和培养 | 第29-30页 |
| ·捕捉p24抗原ELISA方法测定HIV-1的复制 | 第30页 |
| ·化合物对人淋巴细胞系的细胞毒性实验 | 第30-31页 |
| ·化合物对人PBMC细胞毒性实验 | 第31页 |
| ·化合物对实验株HIV-1_(ⅢB)急性感染C8166和MT-4细胞中病毒复制的抑制试验 | 第31页 |
| ·化合物对实验株HIV-1_(ⅢB)急性感染H9细胞中病毒复制的抑制试验 | 第31-32页 |
| ·化合物对耐药株急性感染C8166细胞中病毒复制的抑制试验 | 第32页 |
| ·化合物对临床分离株HIV-1_(KM018)、HIV-1_(TC-1)和HIV-1_(Wan)在PBMC中复制的抑制实验 | 第32-33页 |
| ·化合物对重组HIV-1逆转录酶活性的抑制实验 | 第33页 |
| ·计算公式 | 第33-35页 |
| 结果 | 第35-55页 |
| 1 假病毒筛选药物体系的条件优化 | 第35-39页 |
| ·VSVG/HIV-1_(NL4-3) Luc可高效感染CRFK细胞 | 第35页 |
| ·CRFK中Luc表达水平与病毒接种量呈剂量依赖关系 | 第35-36页 |
| ·3 种不同实验条件下阳性药物对VSVG/HIV-1_(NL4-3) Luc的抑制作用 | 第36-37页 |
| ·VSVG/HIV-1_(NL4-3) Luc筛选不同类型化合物 | 第37-39页 |
| 2 抗HIV-1活性研究 | 第39-55页 |
| ·化合物对细胞的毒性作用 | 第39-44页 |
| ·化合物对实验株HIV-1_(ⅢB)的抑制作用 | 第44-48页 |
| ·化合物对HIV-1_(ⅢB)急性感染C8166细胞的抑制实验 | 第45-46页 |
| ·化合物对HIV-1_(ⅢB)急性感染MT-4细胞的抑制实验 | 第46-47页 |
| ·化合物对HIV-1_(ⅢB)急性感染H9细胞的抑制实验 | 第47-48页 |
| ·化合物对HIV-1耐药株的抑制作用 | 第48-51页 |
| ·化合物对HIV-1临床分离病毒株的抑制作用 | 第51-53页 |
| ·化合物对体外重组的HIV-1逆转录酶活性的抑制作用 | 第53-55页 |
| 讨论 | 第55-58页 |
| 结论 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-64页 |
| 综述 | 第64-78页 |
| 参考文献 | 第73-78页 |
| 攻读学位期间获得的学术成果 | 第78-79页 |
| 致谢 | 第79-81页 |
| 附录 | 第81-85页 |
